Zusammenfassung
Im Kapitel 2 ist der wesentliche Einfluss besprochen worden, welchen Säuren und Basen bzw. H- und HO-Ionen auf die Enzymwirkungen ausüben, und es ist im Anschluss an die experimentellen Daten über die optimale H-Konzentratiou die Auffassung ausführlich besprochen worden, nach welcher Enzyme als Elektrolyte mit Basen bzw. Säuren Salze bilden.
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Literatur
Wenn mehrfach hervorgehoben worden ist (vgl. Euler u. Myrbäck, H. 125, 298; 192 3), dass sich die Giftem p find lichkeit der.Saccharase wenig mit dem Rein hei tsgrad des Enzympräparates ä nder t, so ist damit natürlich der experimentelle Be fundgemeint, dass in Lös ung (oder im Pr äparat) g leichzeitig a nwe sende freie Verun rei nig ungen den Vergi ftungsgrad der Sacch aras e wenig bee infl ussen. Wie die an das Enzymmolekül festge bund enen, an sich ni cht aktiven Gruppen die Ve rgiftungs fähigkeit beeinflussen, ist unbekannt.
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Hinsichtlich enzymatischer Reaktionen liegen hierüber noch keine Untersuchungen vor. Was die oligodynamische Metallwirkung auf Organismen betrifft, so Kann auf Mitteilungen von Spiroverwiesen werden (Münch. med. Wochenschr. 1905, 1601. — Biochem. Zs 74, 265; 1916).
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Willstätter, Waldschmidt-Leitz und A. R. F. Hesse, H. 126, 143; 1923.
Holmbergh, H. 134, 68; 1924.
Mit der Chlorid-Aktivierung hängt vielleicht folgende Beobachtung Rogers zusammen: Menschlicher Speichel wird durch 10–15 Minuten langes Erhitzen auf 85–100° inaktiviert. Setzt man zu der erhitzten Lösung eine kleine Menge frischen Speichels, so verzuckert dieselbe viel stärker als die zugesetzte Speichelmenge allein. Diese Beobachtung ist später von Starkenstein und von Bang (Biochem. Zs 32, 417) bestätigt und ergänzt worden. Biedermanns auffallende Angaben (Fermentforsch. 1, 385; 1916) haben von anderer Seite keine einwandfreie Bestätigung erfahren. Siehe auch 6. Kapitel.
Falkund Winslow, Biol. Chem. 33, 453; 1917.
O. Holmbergh, Biochem. Zs 145, 244; 1924.
In welchem Grade diese Inaktivierung reversibel ist und ob die Bildung von Hypojodit dabei eine Rolle spielt, bleibt noch zu untersuchen.
Neuschlosz, Pflug. Arch. 181, 45; 1919.
Bierry, Biochem. Zs 40, 357 und 44, 415; 1912.
Siehe z. B. Embden und Lehnartz, H. 134, 243; 1924.
Euler und Westling, H. 140, 164; 1924.
Nach Roger sollen Phosphate für die Wirksamkeit der Speichelamylase unbedingt nötig sein (Soc. Biol. 65, 375; 1908; 62, 833, 1020, 1070; 1907).
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Neue Messungen verdankt man Rona und Kleinmann, Biochemn. Zs 150, 444; 1924.
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Abderhalden, Caemmerer und Pinkussohn, H. 59, 293; 1909.
Siehe hierzu auch Euler und Westling, H. 140, 164; 1924.
Embden und Lange, H. 130, 350; 1923. — Embden und Lehnartz, H. 134, 273; 1924. — Emnbden und Haymann, H. 137, 154; 1924.
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Der schädigende Einfluss von CaC12, welchen Malfitano bei Milzbrandprotease gefunden hat, beruht vielleicht darauf, dass das Optimum der Ca-Konzentration weit überschritten war.
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Willstätter, Waldschmidt-Leitz und Hesse, H. 126, 143 und zwar 150; 1923.
Rachford, Jl of Physiol. 25, 165; 1899.
Immerhin wäre ein Vergleich zwischen der Wirkung der Glykocholsäure und der Cholsäure, welcher die Glykokollgruppe abgeht, von Interesse, besonders in Rücksicht auf die Mitwirkung der Peptide, Peptone und Albumine.
Rosenheimund Shaw-Makenzie, Jl of Physiol. 25, 165; 1899.
Eulerund Svanberg, Fermentf. 3, 330; 1920.
Willstätter und Memmen, H. 125. 108 und 129, 3.
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Einige Angaben findet man bei Sigmund, Zbl. f. Bakt. (2) 14, 400; 1905.
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Urban Olsson, a) H. 126, 29, 1923. — b) H. 114, 51; 1921.
Urban Olsson, H. 117, 91; 1921.
Angaben über die Wirkung der Halogene auf Amylasen haben neuerdings (Biochem. Zs 84, 42 und 139, 476; 1923) auch Berczeller und J. Freund gemacht.
Loew, Biochem. Zs 31, 159; 1911.
RonaAund György, Biochem. Zs 111, 115 und zwar 132 ; 1920,
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Eulerund Svanberg, Fermentf. 3, 330; 1920.
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Siehe Dörle, Zs ges. exp. Med. 34, 101 und 406.
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Siehe hierzu Willstätter und Memmen, H. 138, 216, und zwar 243; 1924.
Euler und Svanberg, Fermentf. 4, 29, und zwar 55; 1920.
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Waldschmidt-Leitz, H. 132, 181; 1924.
Euler und Myrbäck, H. 139, 15; 1924.
Auch in anderem Material als Darmsaft sollen Stoffe vorkommen, welche Trypsinogen aktivieren: Nach Hongardy (Arch. int. Physiol. 3, 360; 1906) in dor Milch, nach Delezenne (Soc. Biol. 55, 27 u. 132; 1903) in Leukozyten, Bakterien und Pilzen.
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Dieser letzte Satz ist wörtlich der vorhergehenden Auflage dieses Buches (1920) entnommen, was in Rüdksicht auf eine neuere Darstellung (in Naturw. 12, 134) erwähnt sei.
Waldschmidt- Leitz, H. 132, 181; 1924.
Bei Anwendung der Methode von Willstätter und Waldachmidt-Leitz, nach welcher auf Aminogruppen in alkoholischer Lösung titriert wird (Chem. Ber. 54, 2983; 1921).
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Nach der von Myrbäck(H. 131) ausgeführten Untersuchung über das Auswaschen ist die Wahl der Hefe sehr wesentlich. Aus den hier untersuchten Oberhefen hat sich Co-Zymase nicht auswaschen lassen, dürfte also an einen Zellbestandteil gebunden sein.
Euler und Myrbäck, H. 131, 179; 1923.
Tholin, H. 115, 235; 1921.
Euler und Myrbäck, H. 117, 28 und zwar 38; 1921.
Euler und Signe Karlsson, H. 123, 90; 1922.
Auf den Einfluss von anwesenden Paralysatoren ist H, 117 hingewiesen.
Euler und Myrbäck, H. 139, 15; 1924.
Myrbäckund Euler, Chem. Ber. 57, 1073; 1924.
Meyerhof, H. 101, 165 und Laquer, 102, 4 und 185; 1918.
Embden, H. 93, 94; 1914 und ff. Arbeiten.
Euler und Myrbäck, H. 136, 107, und zwar 111; 1924. — Euler und Karlsson, H. 123, 23; 1922.
Euler und Myrbäck, H. 139, 281; 1924.
O. Cohnheim, H. 39, 336; 1903; 42, 43, 47; 1901–1905.
Vahlen, H. 59, 194; 1909. — 90, 158; 1914. — Miinch. med. Wochenschr. 71, 1924. 7)
Onodera, Biochem. Jl 9, 544; 1915.
Auch Kato (Biochem. Zs 136, 498; 1923) erwähnt einen , Aktivator
Lövgren, Biochem. Zs 119, 215; 1921.
H. Pringsheim und Walter Fuchs, Chem. Ber. 56, 1762; 1923. — Pringsheim und Schmalz, Biochem. Zs 142, 108; 1923. — Pringsheim und Beiser, Biochem. Zs 148, 336; 1924. — Zu Bie derm Ann s„Komplement” (Fermentf. 4, 258) besteht keine Beziehung.
Jacoby, Biochem. Zs 140, 158; 1923. — Siehe auch Franco di Renzo, Biochem. Zs 144, 298; 1924.
Hedin, Jl of Physiol. 32, 390; 1905. — Biochem. Jl 1, 474 ; 1906.
Northrop, Jl Gen. Physiol. 5, 335 ; 1923 und 4, 2 6 1; 1922.
Meyerhof, H. 102, 1 und 185; 1918.
Euler und Myrbä ck, H. 142. Im Druck.
Euler und Walles, H. 132, 167; 1924.
Wie S. 183 bereits erwähnt, kann die Selbstregeneration so gedeutet werden, dass das Metallion in einer primären Reaktion von der Saccbarase mit verhältnismässig grosser Geschwindigkeit gebunden wird, dass aber dann sofort eine mit geringerer Geschwindigkeit verlaufende Reaktion einsetzt, durch welche enzymatisch unwirksame Lösungsbestandteile mit den vergiftenden Metallionen reagieren und diese dem Enzym entziehen. Von mehreren Seiten sind die bei Vergiftungen primär eintretenden Reaktionen als Adsorptionen bezeichnet worden. Nachdem es nun immer deutlicher wird, dass „Sorptionen” in den meisten Fällen chemische Reaktionen darstellen, welche auf eine Oberfläche begrenzt sind, liegt keinerlei Grund vor, hier von Sorption zu sprechen.
Euler und Kullberg, H. 73, 85; 1911.
Euler und af Ugglas, H. 70, 279; 1911.
Rubner, Arch. f. Physiol. Suppl. 1912.
Giaja, Soc. Biol. 82, 719 und 804; 1919. — Jl de Physiol. et Path. gén. 1920, 1094. —Giaja teilt auch die Beobachtung mit, dass Hefe, welche durch Einwirkung von Eingeweide-Saft der Schnecke Helix pomatia ihrer Membran beraubt ist, sich bei Toluolzusatz wie lebende Hefe verhält.
F. Hayduck und H. Haehn, Biochem. Zs 128, 568; 1922.
Euler und Myrbäck, H. 117, 28; 1921.
H. Sobotka, H. 134, 1; 1924.
Vgl. Euler und Westling, H. 140, 164; 1924.
Euler und Kullberg, H. 73, 85; 1911. — Die in dieser Arbeit mitgeteilten Tatsachen sind durch Buchner und Skraup (Biochem. Zs 82, 134; 1917) bestätigt worden. Die abweichende Deutung, welche. diese Autoren ihren Versuchen und denen von Euler geben, kann Verf. nich talsstichhaltig a nerk enne n.
Siehe z. B. Abderhalden, Fermentf. 6, 149; 1922.
Euler und Svanberg, H. 105, 197; 1919.
Siehe z. B. Orient, Biochem. Zs 132 und 144; 1922 und 1924.
Embden und Lehnartz, H. 134, 243. — E. u. Haymann, H. 134, 154; 1924.
Siehe Eulerund Lindner, Chemie der Hefe. Leipzig, Akad. Verlag 1915.
Euler und Swartz, H. 140, 146; 1924. — Euler und Myrbäck, H. 141. — Aktivierungen durch Formiate siehe Euler und Westling, H. 140, 164; 1924.
Abderhaldenund Wertheimer, Pflüg. Arch. 195, 480; 1922 und 198, 571; 1923.
Euler und Löwenhamn, H. 97, 279; 1916.
Euler und Blix, H. 105, 83; 1919. — Siehe auch Euler und Laurin, H. 106, 12; 1919.
Euler und Myrbäck, H. 129, 195; 1923.
Willstätterund Racke, Lieb. Ann. 425, 14; 1921.
Lundberg, Zs f. Gärungsphysiol. 2, 223; 1913.
Siehe hierzu das S. 228 Gesagte, sowie Euler und Walles (H. 132). Verf. hat mit N. Florell versucht, diesen Verhältnissen dadurch näher zu kommen, dass er die Einwirkung von Farhstoflen auf die alkoholische Gärung der Hefe untersuchte (Sv. Vet. Akad. Arkiv f. Kemi Bd. 7, Nr. 18; 1919). Farbstoffe werden von Hefe in zweifacher Weise gebunden: Erstens können die Farbstoffe in die Zellen eindringen und werden darin durch chemische Bindung oder Ausfällung verfestigt oder durch Lösung nach dem Verteilungssatz festgehalten. Zweitens können Farbstoffe an der Zelloberfläche gebunden werden durch chemische Reaktion mit den Eiweissstoffen oder durch andere Art von Adsorption.
Dabei mögen auch Änderungen der Oberflächenspannungen an Grenzscbichten im Sinne Czapeks (Bot. Ber. 28, 480; 1910) eine Rolle spielen.
Hudsonund Paine, Am. Chem. Soc. 32, 1350; 1910.
Euler, Josephson und Myrbäck, H. 130 (Kossel-Festschr.) 87; 1923.
Vgl. Kuhn, in Oppenheimer: Die Fermente und ihre Wirkungen. 5. Aufl. 1924.
Euler, Josephson und Myrbäck, H. 130, 87; 1923.
Hudsonund Paine, Am. Chem. Soc. 32, 1350: 1910.
Willstätterund Stoll, Lieb. Ann. 378, 18; 1910 und 380, 148; 1911.
Bourquelot, Jl de Pharm. et de Chim. (7) 4, 385; 1911 und 5, 388, 534; 1912. — C. r. 154, 944; 1912. — Siehe auch Bourquelot und Bridel, C. r. 156, 1104; 1913. — Siehe auch Jl de Pharm. et de Chim. (7) 7, 27 u. 65; 1913.
Bourquelot, C. r. 157, 1024; 1914.
Willstätter und Waldschmidt•Leitz, H. 125, 132 und zwar 148; 1923.
Sherman, Kendallund Clark, Am. Chem. Soc. 32, 1073; 1910. — Kendall und Sherman, ebenda 32, 1087, 1910.
Giezelt, Pflüg. Arch. 111, 620; 1906.
Willstätter und Waldschnidt-Leitz, H. 125, 132 und zwar 148; 1923.
N. N. Iwanoff, Biochem. Zs 150, 108; 1924.
Laborde, Soc. Biol. 51, 821; 1899.
Gromow und Grigoriew, H. 42, 299; 1904.
Effront, Bull. Soc. Chim. 33, 847; 1905.
Giezelt, Zentralbl. f. Physiol. 19, 769, 851; 1905.
Kobzurenko, Biochem. Zs 66, 344; 1914.
Reichelund Spiro, Hofm. Beitr. 7, 485; 1905.
Vgl. Knaffl-Lenz, Arch. f. exp. Pathol. 97, 292; 1922/23.
Willstätter, Waldschmidt-Leitz, H. 134, 161 u. zw. 221; 1924.
Siehe hierzu auch Willstätter, Waldschmidt-Leitz und Memmen, H. 125, 93; 1922.
Euler und Myrbäck, H. 136, 107 und zwar 129; 1924.
Reichelund Spiro, Hofm. Beitr. 7, 485; 1905.
Willstätter und Waldschmidt-Leitz, H. 125, 132 und zwar 148; 1923.
Die Annahme einer Adsorption des inaktivierenden Stoffes an das Enzym dürfte selten einen Vorzug vor derjenigen einer gewöhnlichen chemischen Bindung zwischen den beiden Komponenten besitzen (vgl. Wo. Ostwald, Koll. Zs. 6, 297; 1910). Vgl. das S. 226 und 227 Gesagte, sowie Euler und Walles (H. 132).
Ich verweise auf die Diskussion über den Mechanismus der Inaktivierung in der Mitteilung IV von Euler und Svanberg (Fermentf. 4, 142; 1920).
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v. Euler, H. (1925). Aktivatoren und Paralysatoren (Gifte). Co-Enzyme. Enzym-Destruktoren. In: Chemie der Enzyme. Chemie der Enzyme. J.F. Bergmann-Verlag, Munich. https://doi.org/10.1007/978-3-662-34433-0_6
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