Zusammenfassung
In Polhill-Raven (1981) wurden die Mimosoideen durch folgende Autoren bearbeitet: Einleitung der Subfamilie, 143–152: T. S. Elias.
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Literatur und Bemerkungen
I. Nielsen, Légumineuses-Mimosoidées, Fascicule 19, 1–159 (1981)
I. Nielsen, Légumineuses-Mimosoidées, in: A. Aubréville et J.-E. Leroy, Flore du Cambodge, du Laos et du Viét-Nam, Muséum National Hist. Nat., Lab. de Phanérogamie, Paris 1981.
I. C. Nielsen, Mimosaceae (Leguminosae-Mimosoideae) in: Flora Malesiana Ser. I, vol. 11, part 1, 1–226 (1992).
G.-J. Krauss und H. Reinbothe, Die freien Aminosäuren in Samen von Mimosaceae, PHYCHEM 12,125–142 (1973). Für spezifische Nachweismethoden einzelner Aminosäuren (z. B. N-Acetyldjenkolsäure und Dichrostachinsäure) vgl. eid., Biochem. Physiol. Pflanzen 161, 577–592 (1970) und für a,ß-Diaminopropionsäure, Albiziin, Mimosin und Azetidin-2-carbonsäure G.-J. Krauss, J. Chromatogr. 74, 152–154 (1972).
P. B. Applewhite, Serotonine and norepinephrine in plant tissues, PHYCHEM 12, 191–192 (1973). Ausgehend von der Annahme, daß aus dem Tierreich bekannte Neurotransmitter wie Acetylcholin, Serotonin und Norepinephrin auch im Pflanzenreich Aufgaben erfüllen, wurden einige für ihre Nastien und Tropismen bekannte Leguminosen untersucht und speziell in den Pulvini von Mimosoideae (Albizia julibrissin, Mimosa pudica, Samanea saman) hohe Gehalte (i.e. 3,5–8,3 ppm des Frischgewichtes) von Serotonin und/oder Norepinephrin (= Noradrenalin) beobachtet; andere Blatteile dieser Mimosoideen, sowie Blätter und Ranken von Phaseolus multiflorus, Pisum sativum und Passiflora quadrangularis hatten niedrigere Gehalte an diesen Aminen.
L. S. Evans and W. A. Tramontana, Trigonelline and promotion of cell arrest in G2 of various legumes, PHYCHEM 23, 1837–1840 (1984).
W. A. Tramontana et al., A survey of trigonelline concentrations in dry seeds of the Dicotyledoneae, Environmental and Experimental Botany 26, 197–205 (1986).
Bulletin Groupe International pour l’étude des Mimosoideae (Bulletin International Group for the Study of Mimosoideae) 1 (1973)-11 (1983); Bulletin of the International Group for the Study of Mimosoideae (Bull. Igsm) 12 (1984)-19 (1991).
A. R. Chowdhury et al., Studies on leguminous seeds, J. Amer. Oil Chemists Soc. 61, 10231024 (1994). Vgl. Bd. XI a, 163.
J. K. P. Weder, Occurrence of Proteinase inhibitors in Mimosoideae, Z. Pflanzenphysiol. 90, 285–291 (1978). Alle untersuchten 22 Samenmuster enthielten PI; solche wurden auch in Gummi Arabicum und im eingedickten Holzextrakt von Acacia catechu (= Catechu oder CvrcH) nachgewiesen.
CH. R. Gunn, Fruits and seeds of genera in the subfamily Mimosoideae (Fabaceae), US Dept. Agric., Agric. Research Service Techn. Bull. No. 1681, 194 S., December 1984.
PH. Guinet, Les Mimosacées — étude de palynologie fondamentale, corrélations,évolution, Institut Français de Pondichéry. Travaux de la Section Scientifique et Technique 9 (1969), 293 p. + XX planches photographiques.
H. R. Prasad et al., Chemotaxonomy of Mimosoideae, Indian J. Bot. 9, 70–71 (1986). Orientierende Tests nach Gibbs 1974, Lc. Bd. Vii, 199. Leider sind die bearbeiteten Pflanzenteile nicht angegeben.
S. M. J. Anuradha et al., Numerical chemotaxonomy of some Mimosaceae, Feddes Repertorium 98, 247–252 (1987). Bei den freien Aminosäuren von alkoholischen Blattextrakten leider nur proteinogene Säuren „identifiziert“; 7 nicht identifizierte Säuren beobachtet.
R. Hegnauer, Phytochemistry and chemotaxonomy, S. 15–27 + Addenda et Errata in [2].
Vgl. Ref. [3], S. 189.
Helen C. Hopkins, The taxonomy, reproductive biology and economic potential of Parkia (Leguminosae: Mimosoideae) in Africa and Madagascar, Bot. J. Linn. Soc. 87, 135–167 (1983).
J. Vivien, Fruitiers sauvages du Cameroun, Fruits 45, 150–151 (1990). Mit Beschreibungen und Abb. der Früchte von Amblygonocarpus andongensis (Oliver) Exell et Torre, Parkia biglobosa (= P. clappertoniana = P. africana) und Prosopis africana (Guillemin et Perrottet) Taubert.
M. J. Ikenebomeh et al., Processing and fermentation of the African locust bean (Parkia filicoidea W/elw.)to produce Dawadawa, J. Sci. Food Agric. 37, 273–282 (1986). Genaue Beschreibung der Bereitung dieses traditionellen westafrikanischen Nahrungs-und Würzmittels aus gekochten, von der Testa befreiten Samen; Nachweis, daß Fermentation für die Dawadawa-Bereitung unerläßlich ist; reife Samen (Wassergehalt 6,4%) enthielten 15% Lipide und 28% Protein.
J. O. Okpala, Nigerian tree crops: Parkia in the economy of the savannah rural population, Savanna 10, No. 2, 92–96 (1989).
F Busson 1965, 1.c. Bd. XI a, 43. Auf S. 272–278 Besprechung der Nutzung von Parkia-Taxa mit Abb.; in den früher französischen Gebieten von Westafrika ist P. biglobosa auch als „Le Néré“, „Le Nété” oder „Le Houlle“ bekannt; die Arbeit enthält auf S. 282–283 Analysen-Ergebnisse für Samenkerne (Kotylen) und Fruchtpulpa von Parkia-und Pentaclethra-Taxa.
The Wealth of India, vol. Vii (1966), 265.
Vide Ref. [12] auf S. 190.
S. C. Garg and V. B. Oswal, Fitoterapia 64, 282 (1993).
R. Gmelin et al., Cyclic polysulphides from Parkia speciosa, PHYCHEM 20, 2521–2523 (1981).
M. Mazelis and L. Fowden, Relationship of endogenous substrate to specificity of S-alkyl cysteine lyases of different species, PHYCHEM 12, 1287–1289 (1973). Versuche mit C-S-Lyasen aus Keimpflanzen von Acacia georginae (enthält u. a. Djenkolsäure) und Albkia julibrissin (enthält u. a. S-Carboxyethylcystein). Stark riechende Polysulfide sind von Keimpflanzen weiterer Mimosaceen bekannt.
J. J. Ochse and R. C. Bakhuizen Van Den Brink 1980, 1.c. Bd. XI a, 70: Parkia S. 401–407, mit Abb. fruchttragender Zweige.
W. Suvachittanont and A. Peutbaiboon, Lectin from Parkia speciosa seeds,PHYCHEM 31, 4065–4070 (1992).
A. Welter et C. Delaude, Bull. Soc. Roy. Sci. Liége 44, 687–689 (1975).
E. O. Udosen and E. T. Ifon, Fatty acid and amino acid composition of African Oil Beans (Pentaclethra macrophylla), Food Chemistry 36, 155–160 (1990). 01- und Linolsäure als Hauptfettsäuren im Samenkernöl; Eiweiß mit relativ günstiger Aminosäurezusammensetzung.
S. C. Achinewhu, Composition and food potential of African Oil Bean (Pentaclethra macrophylla) and Velvet Bean (Mucuna pruriens), J. Food Sci. 47, 1736 (1982). Untersucht Samenkerne; 46% Lipide mit Öl-, Linol-und Lignocerinsäure als Hauptfettsäuren; 34% Rohprotein in den entfetteten Samenkernen.
H. O. Mom.’ and C. P. Okemadu, Biochemical changes during the natural fermentation of the African Oil Bean (P.m.) for the production of Ugba, J. Sci. Food Agric. 49,457–465 (1989). Die Fermentation verbessert u. a. die Proteinqualität und erhöht den Gehalt an Vitaminen der B-Gruppe.
J.-L. Pousset, Pentaclethra macrophylla, S. 110–111 in: Plantes Médicinales Africaines II (1992), Ref. [75] sub Detarieae: Fermentierte Samenkerne als Nahrungsmittel Ugba; Samenöl zur Seifenfabrikation und zu Speisezwecken.
A. Vieux et F Rumafyika, Oléagineux 22,463–467 (1967). Fettsäurespektrum des Samenöls.
A. C. Jones et al., Pentaclethra macrophylla seed oil: Identification of hexacosanic and octacosanic acids, J. Sci. Food Agric. 40,189–194 (1987). Ölausbeute im untersuchten Samenmuster von Sierra Leone 42%. Vergleich der eigenen Ergebnisse mit früher publizierten Fettsäureanalysen.
A. Welter et al., Acide 3(R)[1’(S)-aminocarboxymethyl]-2pyrrolidone-5(S)-carboxylique dans les graines de Pentaclethra macrophylla, PHYCHEM 14, 1347–1350 (1975). Die ebenfalls als Owalasamen und Pauconusse bekannten Samen lieferten 0,41% der neuen Aminosäure.
E. I. Mbadiwe, A nay dicarboxylic amino acid from seeds of Pentaclethra macrophylla, PHYCHEM 14, 1351–1354 (1975). Der Autor extrahierte angeblich Endosperm. Da die Samen aber endospermfrei sind (vgl. Ref. [10], S. 190), muß es sich um Samenkerne, also hauptsächlich um Kotylen gehandelt haben.
A. Hollerbach und G. Spiteller, Die Struktur des Paucins,Monatshefte für Chemie 101, 141–156 (1970). Untersuchung von Paucinhydrochlorid und Paucinacetat von Merck.
E. I. Mbadiwe, Caffeoylputrescine from Pentaclethra macrophylla, PHYCHEM 12, 2546 (1973). Angeblich Endosperm extrahiert (siehe bei [221); 1,4% des Dihydrats von Caffeoylputrescinhydrochlorid erhalten.
A. C. Correia DA Silva et al., An. Fac. Farm. Porto 19, 106 (1959). Ex Biol. Abstr. 36, 18698 (1961).
P. A. Akah and A. I. Nwambie, Evaluation of Nigerian traditional medicines: 1. Plants used for rheumatic (inflammatory) disorders, J. Ethnopharmacol. 42, 179–182 (1994).
S. K. Nigam et al., Stigmasterol glucoside, a constituent of Adenanthera pavonina seed and leaf, PM 23, 145–148 (1973).
G. Misra et al., Adenanthera pavonina. Die Zusammensetzung des Fettes und massenspektrometrische Untersuchungen der Steringlucoside, PM 28, 165–167 (1975).
K. S. Prabhu and T. N. Pattabiraman, Isolation and characterization of a trypsin/ chymotrypsin inhibitor from Indian Red Wood (Adenanthera pavonina) seeds, J. Sci. Food Agric. 31, 967–980 (1980).
N. Yadav et al., Triterpenoids of Adenanthera pavonina bark, PM 29, 176–178 (1976). Etwas über 0,3% kristallisiertes Saponingemisch und etwa 1,8% freie Triterpensäuren isoliert.
A. Gennaro et al., Flavonoids from Adenanthera pavonina, PHYCHEM 11, 1515 (1972). Keine Ausbeuten erwähnt; Holzmuster (Red Sandal WooD) aus Bombay erhalten.
S. Chandra et al., Triterpenoids from Adenanthera pavonina root, Intern. J. Crude Drug Res. 20, 165–167 (1982). 0,2% Saponin isoliert.
E E. and T. J. King, Okanin and isookanin, the isomeric 2,3,4,3’,4’-pentahydroxychalkones, Jcs 1951, 569–571. 1,3% Okanin (trans-Form) und 1,85% Iso-okanin (cis-Form) aus Okan; dieses Holz enthielt auch etwa 10% Gerbstoffe.
H. P. Tchivaounda et al., PHYCHEM 29, 3255–3258 (1990).
Eid., ibid. 29, 2723–2725 (1990).
Eid., ibid. 30, 2711–2716 (1991). Saponin S1 und S2 sind 3,28-Bisdesmoside und die Saponine S3—S5 sind 3-Monodesmoside; in den Zuckerketten sind Glc, Ara und Rha vertreten.
G. E Nicollier and A. C. Thompson, JNP 46, 112–117 (1983); G. E Nicollier et al., Phvtotoxic compounds isolated and identified from weeds, S. 207–218 in: A. C. Thompson (Ed.), The chemistry of allelopathy. Biochemical interactions among plants, Acs Symposium Series 268, Washington, D. C. 1985.
A. C. Thompson et al., Indolealkylamines of Desmanthus illinoensis and their growth inhibition activity, J. Agric. Food Chem. 35, 361–365 (1987).
R. Gmelin, Dichrostachinsäure, eine neue schwefelhaltige Aminosäure aus den Samen von Dichrostachys glomerata (Forsk.)Hutch. et Dala. (Mimosaceae), Hoppe-Seyler’s Z. Physiol. Chem. 327, 186–194 (1962). Nach Gunn haben DichrostachysSamen mit der Testa verwachsenes Endosperm; es ist deshalb wahrscheinlicher, daß die extrahierten Samenkerne Embryonen, i. e. hauptsächlich Kotyledonen, nicht Endosperm waren. Ausbeuten 2,6%.
J. Koudou et al., PM 60, 96–97 (1994).
K. C. Joshi and Mrs. Tara Sharma, PHYCHEM 13, 2010–2011 (1974).
Eid., J. Indian Chem. Soc. 54, 649 (1977).
P. Olesen Larsen et al., Tyrosine O-glucoside and DOPAMINE 3–0-glucoside in seed of Entada pursaetha, PHYCHEM 12, 2243–2247 (1973). Die Angaben für E. gigas und E. polystachya beruhen auf briefl. Mitteilung von E. A. Bell.
E Ikegami et al., Chphsul 33, 5153–5154 (1985); 37, 1932–1933 (1989); PHYCHEM 26, 1525–1526 (1987). Schwefelhaltige Amide vom Typus der Entadamide sind auch aus der Rutaceen-Gattung Glycosmis bekannt; vgl. H. Greger et al., PHYCHEM 32, 933–936 (1993); 34, 175–179 (1993); Tetrahedron 48, 1209–1218 (1992).
E Ikegami et al., PHYCHEM 28, 881–882 (1989).
A. K. Barua et al., Phaseoloidin, a homogentisic acid glucoside from Entada phaseoloides, PHYCHEM 27, 3259–3261 (1988).
J. Dai et al., Phenylacetic acid derivatives and a thioamide glucoside from Entada phaseoloides, PHYCHEM 30, 3749–3752 (1991).
N. L. Dutta, Chemical investigation of Entada scandens Benth., J. Sci. Industr. Res., India 15B, 194–196 (1956). 7,5% Saponine aus entfetteten Samenkernen; Saponin-A und -B rein gewonnen; Hydrolyse liefert ein Sapogenin, C3,,H4805, und Glc + Gal + Xyl + Ara (A) oder Glc + Xyl + Ara (B).
A. K. Barua, The constitution of entagenic acid, a new triterpenoid sapogenin from Entada phaseoloides Merrill,Tetrahedron 23, 1499–1503 (1967); A. K. Barua et al., The constitution of entagenic acid, ibid 23, 1505–1508 (1967); A. K. Barua et al., The structure and stereo-chemistry of entagenic acid, J. Indian Chem. Soc. 47,195–198 (1970). Strukturrevision.
WenChiu Liu et al., A crystalline saponin with anti-tumor activity from Entada phaseoloides, PHYCHEM 11, 171–173 (1972). Samen unbekannter Herkunft lieferten 0,15% C45H82O72 → C30H48O5 + Ara + Xyl.
Y. Okada et al., PHYCHEM 26, 2789–2796 (187); Chphbul 36, 1264–1269 (1988).
V. Hariharan, Chemical constituents of the seeds of Entada scandens Benth., Current Sci. 43, 181 (1974). Nach dem Text wurden die erwähnten Stoffe aus Hülsen (Perikarp), nicht aus Samen, isoliert.
D. N. Grindley et al., J. Sci. Food Agric. 5, 278–280 (1954).
A. Sengupta and S. Basu, Triglyceride composition of Entada phaseoloides seed oil, J. Sci. Food Agric. 29, 677–682 (1978).
R. E Bacon, The physiologically active constituents of certain Philippine medicinal plants, Philippine J. Sci. 1, 1007–1036 (1906). Entada scandens 1021–1025.
S. Rangaswami and V. S. Rao, Indian J. Pharm. 16, 152–154 (1954).
D. S. Leela et al., Toxicity and repellency of certain north east Indian plants for the land leech, Haemadipsa ylvestris (Blanchard), Pesticides, May (1988), 16–17.
K. Janardhanan and K. Nalini, Studies on the tribal pulse Entada scandens Benth.: Chemical composition and antinutritional factors, J. Sci. Food Technol. 28, 249–251 (1991).
CH. T. Sorensen and J. L. Brewbaker, Interspecific compatibility among 15 Leucaena species (Leguminosae: Mimosoideae) via artificial hybridigations, Amer. J. Bot. 81, 240247 (1994). Im Versuchsgarten sind praktisch alle Arten erfolgreich kreuzbar; dies eröffnet die Möglichkeit zur Hybridzüchtung, z. B. in Richtung von weniger giftigen mimosinarmen Sorten.
M. Szyszka, Tierfutter vom Baum. Verwendungsmöglichkeiten von Leucaena leucocephala in den Tropen und Subtropen, Sonderpublikation Giz, No. 192, Eschborn 1987.
J. L. Brewbaker and J. W. Hylin, Variations in mimosine content among Leucaena species and related Mimosaceae, Crop Sci. 5, 348–349 (1965). 72 Herkünfte von Leucaena leucocephala, 3 Herkünfte von L. pulverulenta und je eine Herkunft von L. esculenta und L. lanceolata auf Mimosingehalte der getrockneten Blätter untersucht; 2,9–4,8% bei L. leucocephala, 1,92,6% bei L. pulverulenta, 4,3% bei L. esculenta und 3,8% bei L. lanceolata ermittelt.
R. J. C. Kleipool and J. P. Wibaut, Mimosine (leucaenine). 5th communication, Rec. Tray. Chim. Pays-Bas 69, 37–43 (1950). Eindeutiger Nachweis, daß Mimosin aus Kraut von Mimosa pudica mit Leucaenin aus Samen von Leucaena glauca identisch ist, und daß es mit Alkali 3,4-Dihydroxypyridin liefert.
H. Matsumoto et al., Arch. Biochem. Biophys. 33, 195–200; 201–211 (1951). Kolorimetrische Wertbestimmungen von Mimosin in Blättern; Abbau von Mimosin in Blättern bei höheren Temperaturen.
R. G. Megarrity, An automated colorimetric method for mimosine in Leucaena leaves, J. Sci. Food Agric. 29, 182–186 (1978). 6 Muster; 1,3–3,7%.
J. B. Lowry et al., Autolysis of mimosine to 3-hydroxy4–1(H)pyridone in green tissues of Leucaena leucocephala, J. Sci. Food Agric. 34, 529–533 (1983). Sehr aktive Enzyme, welche Mimosin abbauen, kommen in Fiederblättchen und im Perikarp junger Früchte vor.
R. J. Jones and J. B. Lowry, Australian goats detoxify the goitrogene 3-hydroxy-4(1H) pyridone (DHP) after rumen infusion from an Indonesian goat, Experientia 40, 1435–1436 (1984). Die Mikroflora des Pansens der meisten Wiederkäuer bricht Mimosin und das aus ihm freigesetzte goitrogene 3-Hydroxy-4-pyridon ab (vollständige Entgiftung); bei australischen Geißen wurde Fehlen des 3-Hydroxy-4-pyridon-Abbaus beobachtet; Übertragung dieser Abbaufähigkeit gelang mit Hilfe von Panseninhalt von indonesischen Geißen.
J. B. Lowry et al., Measurement of mimosine and its metabolites in biological material, J. Sci. Food Agric. 36, 799–807 (1985).
B. Tangendjaja et al., Isolation of a mimosine degrading enzyme from Leucaena leaves, J. Sci. Food Agric. 37, 523–526 (1986). Blättchen der jüngsten Blätter enthalten sehr aktive Mimosinase.
KonLeongWee and Stxu-SenWang, Effect of post-harvest treatment on the degradation of mimosine in Leucaena leucocephala leaves, J. Sci. Food Agric. 39, 195–201 (1987). Der Abbau von Mimosin zum für Säugetiere weniger giftigen 3,4-Dihydroxypyridin verläuft schnell und vollständig, wenn Blätter unter Wasser bei 30° bewahrt werden.
J. W. Hylin, Biosynthesis of mimosine, PHYCHEM 3, 161–164 (1964). Lysin liefert den Piperidinring von Pipecolinsäuren und den 3-Hydroxy-4-pyridon-Ring von Mimosin.
I. Murakoshi et al., Purification and characterization of L-mimosine ynthase from Leucaena leucocephala, PHYCHEM 23, 1905–1908 (1984).
E Ikegami et al., Enzymatic synthesis of the thyrotoxic amino acid mimosine by cysteine synthase, PHYCHEM 29, 3461–3465 (1990). Isolation von zwei Isoenzymen, Cysteinsynthase-A und -B, aus Keimpflanzen von Leucaena leucocephala; von diesen ist nur Isoenzym B auch als Mimosin-Synthase aktiv. Höhere Pflanzen verfügen demnach über eine Gruppe von CysteinSynthasen, welche aus 0-Acetylserin nicht nur Cystein bilden kann; das untersuchte Enzym B akzeptierte als Substrat außer H2S (Cysteinbildung) auch MeSH (S-Methylcystein), CH2=CH—CH —SH (S-Allylcystein) und 3,4-Dihydroxypyridin (Mimosin). Solche Cystein-Synthasen können deshalb nicht nur die Synthese von Cystein, sondern auch diejenige von Schutzstoffen, wie beispielsweise Mimosin, katalysieren.
H. STÜNzi et al., Stability constants for metal complexation by isomers of mimosine and related compounds, Austral. J. Chem. 33, 2207–2220 (1980). Mimosin hemmt u. a. Haarwachstum bei Mensch und Tier, was mit Inaktivierung von metallhaltigen Enzymen zusammenhängen könnte. Diese Wirkung dürfte auf Chelierung von zweiwertigen Metallen (Ca, Mg, Cu, Pb, Zn) beruhen.
Vide S. 78–88 in: G. A. Rosenthal (Ref. [7] auf S. 265 von Bd. XI a). Besprechung der verschiedenen toxischen Wirkungen von Mimosin, z. B. goitrogene Wirkung; Unterbrechung von Haarwuchs bei monogastrischen Tieren; Enthaarung von Schafen durch sehr hohe Mimosingaben usw.
Vide S. 18–21 in: G. A. Rosenthal and M. R. Berenbaum (Eds.) 1991, I. c. S. 96 von Bd. XI a. 2–5% (TG) Mimosin in Blättern von Leucaena leucocephala und bis 9% in Samen; Besprechung der verschiedenen toxischen Effekte von Mimosin.
I. Murakoshi et al., Enzymic synthesis of mimosine: A metabolite of mimosine in Mimosa pudica and Leucaena leucocephala; Mimoside: A glucosidic metabolite of mimosine in Mimosa pudica and Leucaena leucocephala; Chphbul 19, 855–857; 2655–2657 (1971). Das während der Keimung gebildete Mimosid könnte eine Transportform des Mimosins sein.
M. P. Hegarty, The isolation of 5-hydroxypiperidine-2-carboxylic acid from Leucaena glauca, Austral. J. Chem. 10, 484–488 (1957). 2 kg frische Blätter lieferten 63 mg 5-Hydroxypipecolinsäure, Mimosin und viel Pipecolinsäure.
Jung-YaoLin and Kuo-HuAngLin, ex CA 55, 23688 (1961). 0,015% 5-Hydroxypipecolinsäure aus Samen.
J. B. Lowry et al., Flavonol glycosides in cultivars and hybrids of Leucaena leucocephala, J. Sci. Food Agric. 35, 401–407 (1984).
C.-H. Chou and Y.-L. Kuo, Allelopathic exclusion of understory by Leucaena leucocephala, J. Chem. Ecol. 12, 1431–1448 (1986); vgl. auch Y.-L. Kuo et al., Allelopathic potential of Leucaena leucocephala, Institute of Botany Academica Sinica, Annual Report, July 1981-June 1982, 10–12, Taipei, Taiwan.
A. G. R. Nair and S. S. Subramanian, Flavonoids of the flowers of Dombeya calantha and Leucaena glauca, Current Sci. 31, 504–506 (1962).
R. M. Ranganathan and S. Nagarajan, Flavonoids of the flowers of Leucaena glauca,Current Sci. 49, 546 (1980).
V. Plouvier, CR 255, 1770–1772 (1962).
M. Q. Farooq and S. S. Siddiqui, J. Amer. Oil Chemists’ Soc. 31, 8–9 (1954); auch CA 48, 30476 (1954). 16:0=13, 18:0=5, 22:0=4, 24:0 =1, 18:1=23 und 18:2=54%.
A. M. Unrau, Constitution of a galactomannoglycane from the seed of Leucaena glauca, J. Org. Chem. 26, 3097 (1961).
J. Y. Morimoto et al., J. Agric. Food Chem. 10, 134–137 (1962). Neben Samenschleimen auch Blattschleim (2,5% isoliert) untersucht und im Hydrolysat 36% Gal, 17% Ara, 8% Xyl, 19% Rha und 14% Uronsäuren nachgewiesen.
P. L. Soni et al., Indian J. Chem. 30B, 843–848 (1991). Das Leucaena-Gummi erinnert in seinen Eigenschaften stark an Gummi Arabicum.
J. D. Dubois et al., Free amino acid pools,isNfixation and assimilation in Leucaena leucocephala var. K-8, Amer. J. Bot. 77, 316–322 (1990).
R. S. Ambasht and A. K. Srivastava, Nitrogen dynamics of actinorhizal Casuarina forest stands and its comparison with Alnus and Leucaena forests, Current Sci. 66, 160–163 (1994). Unter den geprüften Verhältnissen war Casuarina optimaler Bodenverbesserer.
R. C. Barneby, Sensitivae censitae. A description of the genus Mimosa Linnaeus (Mimosaceae) in the New World,Mem. New York Bot. Garden 65, 1–835 (1991). Mit 5 Sectiones, Mimadenia (16 Species), Batocaulon (179), Calothamnos (25), Habbasia (79) und Mimosa (178). Innerhalb dieser 5 Sectiones werden 4, 25, 1, 9 und 3 Series unterschieden. Bei der Series Mimosa von Sektion Mimosa werden außerdem 37 Subseries beschrieben.
D. S. Correll and M. C. Johnston, Manual of the vascular plants of Texas, Texas Research Foundation, Renner, Texas 1970. In Texas kommen vor: Schrankia hystricina,latidens, microphylla, occidentalis, roemeriana und uncinata; sie entsprechen den Mimosa quadrivalvis-Varietäten hystricina,latidens, occidentalis, angustata (Sch. microphylla und uncinata) und platycarpa (Sch. roemeriana).
H. Schildknecht, Über die Chemie der Sinnplanze Mimosa pudica L., Sitzungsber. Heidelberger Akad. Wiss., Math.Naturw. Klasse, Jahrgang 1978, 337–402 (= 6. Abhandlung, 1–32), Springer-Verlag, Berlin 1978. Enthält auch Farbphotographien von Exemplaren an natürlichen Standorten vor und nach seismonastischer Reaktion.
N. A. Campbell et al., Calcium and potassium in the motor organ of the sensitive plant: Localization by ion microscopy, Science 204, 185–187 (1979).
M. Pal et al., A novel tubulin from Mimosa pudica: Purification and characterization, Europ. J. Biochem. 192,329–335 (1990).
H. P. Tiwari et al., Biosynthesis of mimosine: Incorporation of serine and of a-aminoadipic acid, Phychem 6, 1245–1248 (1967). Versuchspflanze war Mimosa pudica.
R. N. L. Harris and T. Teitet, Potential wool growth inhibitors. 2(11–1) pyridone analogues of mimosine, Austral. J. Chem. 30, 649–655 (1977). Synthese und biologische Testung von Analogen des Mimosins (... the naturally occurring depilatory amino acid). Verwendung des Mimosins bei der Schafwollproduktion wurde erwogen: Statt Schur spontanes Abfallen der Wolle nach geeigneten Gaben von Mimosin oder Mimosinanalogen.
A. MosTad et al., The crystal structure of L-mimosine sulphate hydrate, Acta Chem. Scand. B28, 249–259 (1974). C5H3(OH)2CH2CH(NH3)Cooh 504 1,5 H2O oder C8H10 20 H2SO4 1,5 H2O.
R. Gmelin et al., N-Atetyldjenkolic acid, a novel amino acid isolated from Acacia farnerrana Willd., PHYCHEM 1, 233–236 (1962). Freie Hauptaminosäure in Samen von Acacia farnesiana (etwa 2,7% Rohprodukt isoliert); in Samen von A. horrida Willd., A. karroo Hayne und Mimosa acanthocarpa Benth. nur mit Hilfe von PC nachgewiesen.
R. Gmelin, Isolierung von Willardiin ([3–1-Uracyl]-L-alanin)aus den Samen von Acacia millefolia, Acacia lemmoni und Mimosa asperata, Acta Chem. Scand. 15, 1188–1189 (1961).
A. G. Ferreira et al., Allelopathy in Brasil, S. 243–250 in: RIzvr-Rizvi (1992), 1. c. S. 15.
R. and Marianne Wasicky, Tribuna Farmaceutica 20, 40–47 (1962): Ex Excerpta Botanica, Sectio A 7, 496 (1964).
J. W. de Alencar et al., Acido morolico em Mimosa caesalpiniaefolia, An. Acad. Brasil. Cienc. 42 (Suppl.), 93–94 (1970)
J. W. de Alencar et al., 3-O-Arabinosylmorolic acid from Mimosa caesalpiniaefolia, Rev. Latinoamer. Quim. 7, 44 (1976).
N. Hussain et al., Antimicrobial principle in Mimosa hamata Willd., JNP 42, 525–527 (1979). Umesterung wäre möglich, da mit EtOH extrahiert.
B. K. Mehta et al., 4-Ethylgallic acid from two Mimosa species, PHYCHEM 27, 3004–3005 (1988).
R. Gmelin et al., Über neue Aminosiiuren aus Mimosaceen, Hoppe-Seyler’s Z. Physiol. Chem. 314, 28–32 (1959).
R. K. Hulyalkar et al., Composition of the mucilage of Mimosa pudica, J. Indiati Chem. Soc. 33, 864–866 (1956). Unzerkleinerte Samen lieferten annähernd 5,7% sauren Schleim, der zur Hauptsache aus Xylose und Glucuronsäure im Verhältnis 5: 1 aufgebaut ist. Methoxylund Acetylgruppen waren nicht nachweisbar. Offensichtlich handelt es sich um einen Testaschleim, welcher die Glucuronsäure als Salze (Fe“’; mg..; Cal) enthält.
J. S. Aggarwal and Karimullah, Chemical analysis of the seeds of Mimosa pudica, I. Analysis of fatty oil, J. Sci. Industr. Res., India 4, 80 (1945/46). Ausbeute 17%; Fettsäurespektrum 16:0 + 18:0 = 18%, 18:1 = 31%, 18:2 = 51%.
J. Englert et al., C-Glyco ylflavones from aerial parts of Mimosa pudica, PM 60, 194 (1994).
Y. Jiang et al., Structure of a new saponin from the seed of Mimosa pudica, PM 56, 555 (1990).
P. Kumar and P. Sen, Study of the unsaponifiable matter from the root oil of Mimosa rubicaulis, Current Sci. 44, 889–890 (1975).
E. H. E DE Moraes et al., Quim. Nova 13, 308 (1990): Ex Reports 10, 352 (1993).
M. P. Gupta et al., The occurrence of tryptamine and N-methyltryptamine in Mimosa somnians, JNP 42, 234–236 (1979).
J. I. Ramirez-Domenech and Shirley C. Tucker, Phylogenetic implications of inflorescence and floral ontogeny of Mimosa strigillosa, Amer. J. Bot. 76, 1583–1593 (1989).
I. J. Pachter et al., Indole alkaloids of Acer saccharinum (the Silver Maple), Dictyloma incanescens, Piptadenia colubrina and Mimosa hostilis, J. Org. Chem. 24, 1285–1287 (1959).
Y. Jiang et al., Saponins from the bark of Mimosa tenuiflora, PM 57, Supplement issue 2, A38–A39 (1991); PHYCHEM 30, 2357–2360 (1991); JNP 54,1247–1253 (1991). Zur Bezeichnung der isolierten Verbindungen drängen sich zwei Bemerkungen auf. Phytosterin-3-glucoside sind keine echten Saponine. Die Bezeichnung Mimonoside ist unglücklich, da es sich keineswegs um Monoside handelt; Mimososide wäre näherliegend.
R. Anton et al., Pharmacognoy of Mimosa tenuiflora, J. Ethnopharmato1. 38, 153–157 (1993); vgl. auch Y. Jiang et al, Biological effects of the saponins from Mimosa tenuiflora on fibroblast cells in culture, PM 57, Supplement issue 2, A38 (1991).
X. A. Dominguez et al., Kukulkanins A and B, new thaltons from Mimosa tenuefolia L., JNP 52, 864–867 (1989). Der Trivialname Kukulkanin ist von der Bezeichnung der Pflanze durch die Indianer der Gegend, in welcher das Material gesammelt wurde, abgeleitet. Dort wird diese Art seit langem zur Behandlung von Brandwunden verwendet.
V. S. Raid et al., Synthesis of kukulkanins A and B,methoxy chalcones from Mimosa tenufolia L., Tetrahedron 48, 8347–8352 (1992). Strukturbeweis durch Synthese.
R. E. Schultes and A. Hofmann, The botany and chemistry of hallucinogens, Charles C. Thomas, Publishers, Springfield, Illinois, Usa 1973. Anadenanthera (= Piptadenia sect. Niopa) S. 84–93 mit Abb. von A. peregrina; Mimosa S. 95–96 mit Abb. von M. hostilis.
T. A. Smith, Tyramine and related compounds in plants, PHYCHEM 16, 171–175 (1977).
P. J. Peterson and P. J. Robinson, L-Cystathionine and its selenium analogue in Neptunia amplexicaulis, PHYCHEM 11, 1837–1839 (1972).
P. A. G. M. DE Smet, South American ritual Anadenanthera enemas, Pharm. Weekblad 116, 1187–1191 (1981).
R. Paris et al., Sur les alcaloïdes et les flavonoïdes d’une Légumineuse d’ Haiti: Piptadenia peregrina Benth. Absence d’alcaloïdes chez le Piptadenia africana Hook. f., Ann. Pharm. Franç. 25, 509–513 (1967). Samen von P. africana stammten von der Elfenbeinküste.
G. A. Iacobucci and E. A. RI Veda, Bases derived from tryptamine in Argentine Piptadenia species, PHYCHEM 3, 465–467 (1964).
S. Yamasoto et al, Organic bases from Brazilian Piptadenia species, PHYCHEM 11, 737–739 (1972).
I. J. Pachter et al., vide Ref. [86].
A. M. Giesbrecht, Bufotenine occurrence in Piptadenia falcata seeds, An. Assoc. Brasil. Quim. 19, 117–119 (1960): Ex CA 56, 10281 (1962).
V. L. Stromberg, The isolation of bufotenine from Piptadenia peregrina, J. Amer. Chem. Soc. 76, 1707 (1954). Ausbeute 0,94%; Samen von Puerto Rico erhalten.
M. S. Fish et al., Piptadenia alkaloids. Indole bases of P. peregrina (L.) Benth. and related species, J. Amer. Chem. Soc. 77, 5892–5895 (1955). Drei Samenmuster von P. peregrina (Puerto Rico, Brasilien)zwei von P. macrocarpa (Brasilien, Florida) und brasilianisches Muster von P. paniculata auf Alkaloide geprüft.
G. Legler und R. Tschesche, Die Isolierung von N-Methyltryptamin, 5-Methoxy-N-methyltryptamin und 5-Methoxy-N,N-dimethyltryptamin aus Rinde von Piptadenia peregrina Benth., Naturwissenschaften 50, 94–95 (1963).
S. Agurell et al., Identification of two new ß-carboline alkaloids in South American hallucinogenic plants; Alkaloids of certain species of Virola and other South American plants of ethnopharmacological interest, Biochem. Pharmacology 17, 2487–2488 (1968); Acta Chem. Scand. 23, 903–916 (1969). Auch alkoholkonservierte Blätter und Rinde von Anadenanthera (Piptadenia) peregrina untersucht.
R. E. Schultes, The botanical origin of South American snuffs, S. 291–306 in: Efron 1967,1. c. Bd. Vii, 48. Viele Angaben zur Bedeutung von Anadenanthera peregrina für die Bereitung von halluzinogenen Schnupfpulvern.
S. Von Reis Altschul, Vilca and its uses, S. 307–314 in: Efron 1967, 1. c. Bd. Vii, 48. Auf S. 310 Karte mit Verbreitung der 10 wichtigsten Eingeborenen-Namen von Anadenanthera-Taxa in Südamerika; Vilca auf Peru beschränkt, also mutmaßlich Piptadenia macrocarpa (vgl. h bei Tabelle 9).
BO Holmstedt and J.-E. Lindgren, Chemical constituents and pharmacology of South American snuffs, S. 339–373 in: Efron 1967, 1. c. Bd. Vii, 48. Für Piptadenia peregrina, macrocarpa, exceisa und colubrina vide Table 2, p. 362.
R. E. Schultes et al., Phytochemical examination of Spruce’s ethnobotanical collection of Anadenanthera peregrina, Bot. Museum Leaflets (Harvard Univ.) 25, 273–287 (1977). Die Autoren analysierten Material (Samen, Keimpflanzen, Hülsen, Blätter, Zweige, Rinde, Wurzeln) einer vor etwa 40 Jahren auf Puerto Rico angepflanzten Population von Piptadenia (Anadenanthera) peregrina, und fanden sehr wechselnde Gehalte an Dimethyltryptamin, 5-Hydroxydimethyltryptamin (= Bufotenin), 5-Methoxydimethyltryptamin und 2-Methyl1,2,3,4-tetrahydro-ß-carbolin. In frisch geernteten reifen Samen konnten neben 80% Bufotenin auch 19% Dimethyltryptamin und Spuren von 5-Methoxydimethyltryptamin und 2-Methyltetrahydro-ß-carbolin nachgewiesen werden; nach zweijähriger Lagerung war nur noch Bufotenin vorhanden. Auch ein vor 140 Jahren in Südamerika gesammeltes Samenmuster von Piptadenia peregrina enthielt nur Bufotenin. In Blättern und Rinde eines Baumes von Boa Vista, Brasilien (Schultes No. 24625) wurden Dimethyltryptamin und 5-Methoxydimethyltryptamin (Blatt) und zusätzlich 5-Methoxymonomethyltryptamin, 2-Methyl-6methoxytetrahydro-ß-carbolin und 1,2-Dimethyl-6-methoxytetrahydro-ß-carbolin (Rinde) nachgewiesen. In 5 weiteren Piptadenia-Samenmustern verschiedener Herkunft und unterschiedlicher Lagerungsdauer war oft nur wenig Dimethyltryptamin nachweisbar, oder aber zusätzlich noch etwas 5-Methoxydimethyltryptamin vorhanden. Es ist anzunehmen, daß die für reife Piptadenia(Anadenanthera)-Samenmuster ermittelten Basenspektren von der betreffenden Population (Chemodeme innerhalb bestimmter Taxa?) oder vom betreffenden Taxon, von der Dauer der Lagerung der jeweiligen Samenproben und von den gewählten Analysenmethoden abhängig sind.
L. Rivier, Indole protoalkaloids metabolism in Anadenanthera seeds, PM 39, 215 (1980).
P. A. G. M. DE Smet and L. Rivier, Intoxicating Parka seeds of Brazilian Maui Indians, Econ. Bot. 41, 12–16 (1987). Wahrscheinlich handelte es sich bei den untersuchten Samen um var. cebil (vgl. [105] und Tabelle 9 und Legende dazu).
Linda E. Fellow and E. A. Bell, Indole metabolism in Piptadenia peregrina, PHYCHEM 10, 2083–2091 (1971).
Prof. J.–A. Braun, Université d’Abidjan, briefl. Mitt. vom 20–11–1972.
L.-C. Comeau et al., Étude chimique de Piptadeniastrum africanum. I Étude des glycosides: Les aglycones, Bull. Soc. Chim. France 1974, 2643–2646. Aus Stammrinde annähernd 1% reines Saponingemisch erhalten; Hydrolyse lieferte u. a. Oleanol-und Echinocystsäure.
Y. Miyauchi and T. Yoshimoto, Extractives from the heartwood of Piptadenia sp., Mokuzai Gakkaishi 22, 47–50 (1976).
F. J. A. Mattos et al., Furan diterpenes from Plathymenia genus, JNP 47, 581–584 (1984). Nach diesen Autoren halten Heringer und Mattos Filho, im Gegensatz zu Ducke, an zwei selbständigen PlathymeniaArten in Brasilien fest.
E. E. King et al., The isolation of a diterpene ester (methyl vinhaticoate), and of 6: 7: 3’: 4’-tetrahydroxyflavone (plathymenin) and 2: 4: 5: 3’: 4’ pentahydroxychalkone (neo-plathymenin), from Plathymenia reticulata, Jcs 1953, 1055–1059: 1,5–1,6% Methylvinhaticoat, 5,3% Plathymenin und 2% Neoplathymenin (orange, plättchenförmige Kristalle); F. E. King and T. J. King, The constitution of methyl vinhaticoate, ibid. 1953, 4158–4168; T. J. King and S. Rodrigo, Plathyterpol, a diterpene from Plathymenia reticulata, Jcs Chem. Commun. 1967, 575; T J. King et al., The stereochemistry of plathyterpol, a diterpene with A: B-cis ring fusion, Jcs Chem. Commun. 1969, 683. Plathyterpol = C20H34O.
A. M. Agnese et al., Two new flavonoids from Prosopidastrum globosum, JNP 49, 528–529 (1986).
B. B. Simpson (Ed.), Mesquite. Its biology in two desert scrub ecosystems, US/Ibp Synthesis, Series 4, Dowden, Hutchinson and Ross. Inc., Stroudsburg, Pennsylvania 1977. Mit 10 Kapiteln: 1. Introduction; 2. Phenology, Morphology, Physiology; 3. Patterns of variation (O. T SoLbrig et al., 44–60, mit auf S. 50–54 Beitrag von N. J. Carman, Variation in natural products chemistry: Flavonoide und freie Aminosäuren der Blätter); 4. Prosopis leaves as a resource for insects; 5. Prosopis flowers as a resource (Bestäubungsbiologie); 6. Prosopis fruits as a resource for invertebrates;7. Prosopis as a niche component; 8. Mesquite in Indian cultures of North America (R. S. Felger, 150–176; Südwestl. Staaten der Usa und nordwestl. Staaten von Mexico; Food; Medicine; Cosmetic; Spiel und Sport; Technische Zwecke; Brennholz; Rituale Zwecke). 9. Mesquite and modern man in southwestern North America (C. E. Fisher, 177–188: Wechsel der Wertschätzung von Prosopis-Sippen im Laufe der vergangenen 70 Jahre. „It is now considered the major agricultural pest of the southern rangelands“ [= aride Gebiete bis Halbwüsten]. Eine schnell ändernde technisch orientierte Kultur veränderte auch die Beziehung des Menschen zu früher hochgeschätzten Nutz-, Medizinal-und Ritualpflanzen); 10. Algarrobos in South American cultures. Past and present: H. L. D’ANroNI and O. T. SoLbrig, 189–199. Vielseitige Benützung von Prosopis durch Indianerstämme von Peru, Bolivien, Chile, Argentinien, Paraguay und Uruguay (Nahrung, Arzneimittel, Brenn-und Konstruktionsholz u. a.); ähnlicher Zurückgang der Wertschätzung der Gattung in jüngster Zeit wie in Nordamerika; Ursachen sind Überbeweidung der Pampas und lange Trockenperioden, welche explosive Vermehrung von Prosopis-Sippen begünstigen. Das Buch schließt mit einem Appendix: The genus Prosopis and annotated key to the species of the world von A. Burkart and B. B. Simpson, 201–215, References, 217–235, und einem guten Index of scientific names, 237–245.
B. O. Pedersen, A note on the genus Prosopis, The International Tree Crops Journal 1, 113–124 (1980). Liste von 21 ökonomisch vielversprechenden Arten für aride Gebiete; wichtig ist gute Salztoleranz und extreme Toleranz für Trockenheit von vielen Sippen. Nutzen: Holz, Viehfutter, Nahrung, Bienenweide für Honigproduktion usw. In „Conclusions“ Liste der 12 meistversprechenden Arten.
N. J. Carman et al., A populational survey of amino acids in Prosopis species from North and South America, Biochse 2, 73–74 (1974). Die hier verwendete Klassifikation von Burkart (1954) weicht von der in [117] aufgenommenen Klassifikation von Burkart und Simpson (1977) in einigen Punkten ab.
N. J. Carman in Ref. [117].
B. J. Camp and M. J. Norwell, The pheny!ethylamine alkaloids in native range plants, Econ. Bot. 20, 274–278 (1966).
M. N. Graziano et al., JNP 34, 453–454 (1971).
Gloria A. MoRO et al., PHYCHEM 14, 827 (1975). Zur Biogenese von /3-Carbolinen vide auch D. GRÖGer, Simple ß-carboline alkaloids, S. 275--277 in: K. Mothes et al. (Eds.), Biochemistry of alkaloids, Veb Deutscher Verlag der Wissenschaften, Berlin/ Ddr 1985 und Vch Verlagsgesellschaft, Weinheim.
G. Ratle et al., La prosopine et la prosopinine, alcaloides du Prosopis africana (Guill. et Perr.) Taub. (Note préliminaire), Bull. Soc. Chim. France 1966, 2945–2947.
Q. Khuong-Huu et al., Bull. Soc. Chim. Belges 81, 425–442, 443–458 (1972). Definitive Strukturen Prosopin und Prosopinin und Isolation von Prosophyllin, Prosafrin und Prosafrinin aus Blättern und der Isoprosopinine -A und -B aus Stammrinde (Text und Summary) und Wurzeln (nur in Summary erwähnt); Ausbeuten: 0,25% Prosopinin, 0,18% Prosopin; 0,07% Prosophyllinhydrochlorid, 0,03% Prosafrin und 0,0035% Prosafrinin aus getrockneten Blättern; 0,3% Totalalkaloide aus Stammrinde mit Isoprosopinin-A und -B als Hauptalkaloiden. Strukturen der zwei Rindenalkaloide und der drei neuen Blattalkaloide.
P. Bourrinet et A. Quevauviller, Données pharmacologiques sur les alcaloïdes du Prosopis africana en particulier la prosopine et la prosopinine, Ann. Pharm. Franç. 26, 787–796 (1968). Vgl. zur Pharmakologie und zur Bedeutung dieser Pflanze als Fischfangmittel, als Adjuvans bei der Bereitung eines Jagdgiftes, sowie als Arzneimittel S. 600–603 in: NeuwInger, 1. C. S. 12.
K. Jewers et al., Lipids, sterols and a piperidine alkaloid from Prosopis spicigera leaves, PHYCHEM 15, 239–240 (1976). Außer Spicigerin auch Phytosterine, Phytosteringlykoside, Hentriacontan, Octacosanol, Triacontanol und Wachsester (C1G-C3 -Säuren mit C26-C32-Alkoholen) isoliert.
E. Leete et al., Determination of the „starter` acetate unite in the biosynthesis of pinidine, Tetrahedron Letters 1975, 3779–3782. Hypothese: Das Nonaacetat Spicigerin entsteht wahrscheinlich auf ähnlichem Wege wie das Pentaacetat Pinidin, bei dessen Biosynthese allerdings durch Decarboxylierung ein C-Atom verloren geht.
I. B. Gianinetto et al., JNP 43, 632–633 (1980). Rinde enthält auch nicht identifiziere Nebenalkaloide; Identifikation von N-Methylcassin durch Vergleich mit N-methyliertem Cassin; keine Ausbeuten erwähnt.
RitaOtt-Longoni et al., Die Konstitution des Alkaloides Juliprosopinaus Prosopis juliflora A. DC., Helv. Chim. Acta 63, 2119–2129 (1980). Wurzeln, Stamm, Samen und Blätter lieferten 0,2%, 0,05%, Spuren und 1,5% qualitativ identische Alkaloidgemische. Aus 5 kg Blätter 4 Hauptalkaloide isoliert und Struktur Juliprosopin geklärt.
P. Datwyler et al., ÜberJuliprosin, ein weiteres Alkaloid aus Prosopisjuliflora A. DC., ibid 64, 1959–1963 (1981). Struktur des quartären Julipro-sins ermittelt; sein Kation entspricht der Formel C40H7203N2.
A. Kandasamy et al., Hemolytic effect of Prosopis juliflora alkaloids, Current Sci. 58, 142–144 (1989).
V. U. Ahmad et al., New alkaloids from Prosopisjuliflora DC., Z. Naturforsch. 33b, 347–348 (1978).
A. Ahmad et al., Antibacterial activity of juliflorine isolated from Prosopis juliflora, PM 52, 285–288 (1986).
V. U. Ahmad et al., Alkaloids from leaves of Prosopisjuliflora DC.,JNP 52, 497–501 (1989).
V. U. Ahmad et al., A new alkaloid from Prosopis juliflora, Sci. Pharm. (Wien) 58,409–411 (1990).
A. Ahmad et al., Antifungal activity of some hydrosoluble Prosopisjuliflora alkaloids, Fitoterapia 60, 86–89 (1989).
G. M. Struntz and J. M. Findlay, Pyridine and piperidine alkaloids, The Alkaloids 26, 89–183 (1985). 2,6Dialkylierte Piperidin-3-ole auf S. 90–102; auch dimere Basen mit Indolizidinring (Juliprosopin) behandelt.
G. B. Fodor and Brenda Colasanti, The pyridine and piperidine alkaloids: Chemistry and pharmacology, Alkaloids: Chem. Biol. Persp. 3, 1–90 (1985). Cassia-und Prosopis-Alkaloide auf S. 68–73; dimere Basen mit Indolizidinring nicht behandelt.
K-I Takao et al., Stereoselective total syntheses of (−)-Desoxoprosopinine and (—)-Desoxoprosophylline,Tetrahedron 50, 5681–5704 (1994). Synthese von (+)- und (−)-Desoxoprosopinin und von (+)- und (−)-Desoxoprosophyllin; gleichzeitig Übersicht über Synthesen von Prosopis-Alkaloiden.
M. B. Raizada and R. N. Chatterji, A diagnostic key to the various forms of introduced Mesquite (Prosopisjuliflora DC.), Indian Forest Bull. 14, 1–6 (1954). Mit Abb. von Blättern und Blütenständen und von Früchten.
S. Malhotra and K. Misra, New flavanones from Prosopis juliflora roots, PM 47, 46–48 (1983).
Eid., 3,3’-Di-O-methylellagic acid 4–0-rhamnoside from roots of Prosopisjuliflora, PHYCHEM 20, 20432044 (1981); A novel tannin from Prosopis juliflora roots, Current Sci. 52, 583–585 (1983).
R. Shukla et al., New leucocyanins from Prosopis juliflora bark,PM, Supplement 1980, 48–51.
R. Vajpeyi (née Shukla) and K. Misra, Two flavonoid glycosides from the bark of Prosopis juliflora, PHYCHEM 20, 339–340 (1981).
Eid., Indian J. Chem. 20B, 348–350 (1981).
S. Malhotra and K. Misra, An ellagic acid glycoside from pods of Prosopis juliflora; Ellagic acid 4–0-rutinoside from pods of P. j.,PHYCHEM 20,860–861; 24392440 (1981); 3,3’Di-O-methylellagic acid 4-O glucurono yl-arabino yl-arabino yl-glucoside from pods of P. j., PM 45, 143 (1982): Kurzvortrag K37.
Eid., Polyphenols from Prosopis juliflora pods, Indian J. Chem. 22B, 936–938 (1983).
L. H. Bragg et al., Flavonoid patterns in the Prosopisjuliflora complex, Biochse 6, 113–116 (1978).
R. C. Sharma et al., Indian J. Chem. 2, 83–84 (1964). Ausbeute 0,055%.
D. K. Bhardwaj et al., PHYCHEM 18,355–356 (1979). Prosogerin-A = 6-Methoxy-7-hydroxy-3’,4’-methylendioxyflavon; Prosogerin-B = 2’,4’-Dihydroxy-5’-methoxy-3,4-methylendioxychalkon.
D. K. Bhardwaj et al., Indian J. Chem. 16B, 1133–1134 (1978); 20B,446–448 (1981); PHYCHEM 19,1269–1270 (1980). Isolation, Struktur, Synthese.
D. K. Bhardwaj et al., Chemical examination of Prosopis spicigera seeds, JNP 44, 656–659 (1981). 10 kg Samen lieferten 80170 mg der sechs erwähnten Verbindungen; Ausbeuten demnach im 8–17 ppm-Bereich.
M. I. Ikramov et al., Khim. Prirod. Soedin. 1990, 274–276; vgl. auch engl. Ausgabe: Chemistry of Natural Compounds 26, 226–227 (1990). Das untersuchte Material (the buds) wurde in der Kashkadar’ya Provinz von Uzbekistan gesammelt; keine Angaben von Ausbeuten.
A. KÉRY et al., Flavonoid composition in some Iraqi plants used in folk medicine, S. 171–181 in: L. Farkas et al. (Eds.), Flavonoids and Bioflavonoids 1985, Elsevier, Amsterdam 1986. Prosopis farcta 174–176.
S. Etessami, Contribution à l’étude de la matière médicale de I’Iran, Thése, Fac. Pharm., Univ. Paris 1949, 168 S., Jouve et Cie, Editeurs, Paris 1949.
I. B. Gianinetto et al., Flavonoid compounds of the genus Prosopis. I., JNP 38, 265–267 (1975). Blattmaterial von Argentinien untersucht.
R. A. Giollo and H. R. Juliani, PHYCHEM 15, 2027 (1976). In: Phytochemical Reports; für beide Taxa wird angegeben „whole plants“; gemeint sind wohl beblätterte Zweige.
A. M. Gitelli et al., Flavonoides en el genera Prosopis (Leguminosae). IV., An. Asoc. Quim. Argentina 69, 33–36 (1981). Bei den „espinas“ handelt es sich mutmaßlich um Stipulardorne.
I. B. Gianinetto and H. R. Juliani, PHYCHEM 15, 1098 (1976). In: Phytochemical Reports; Blattmaterial.
J. A. Herrera et al., Flavonoids in the genus Prosopis. VI., An. Asoc. Quim. Argentina 75, 379–380 (1987).
C. A. Chiale et al., Flavonoides en el genero Prosopis. V., Ibid. 72, 501–504 (1984).
T. YoshimoTO et al., n-Hexane extracts from the heartwoods of genera Machaerium and Prosopis, Mokuzai Gakkaishi 21, 686–689 (1975). Botanische Abstammung der zwei Zier-und Werkhölzer durch das Exportland (in casu Brasilien) garantiert; offenbar wurde das bolivianische Prosopis-Holz über Brasilien exportiert.
N. J. Carman and T. J. Mabry, Disjunction of Prosopis reptans and the origin of the North American populations, Biochse 3, 19 —23 (1975). N. B. Die in dieser Arbeit angegebenen Flavonoidmuster für einige Prosopis Arten stimmen nur teilweise mit den in Ref. [117 und 159 b] mitgeteilten Mustern überein. Dies unterstreicht die Tatsache, daß einem bei vergleichenden Flavonoiduntersuchungen sehr leicht Verwechslungen von sich ähnlich verhaltenden Flavonoiden unterlaufen können; die Interpretation der Flecken komplexer Chromatogramme kann zuweilen auch dem auf diesem Gebiete erfahrenen Forscher Schwierigkeiten bereiten. Zudem werden bei Reihenuntersuchungen oft nicht alle Möglichkeiten ausgeschöpft, welche eine definitive Identifikation der Flecken gewährleisten würden.
J.-P. Simon, Comparative serology of a disjunct species group: The Prosopis juliflora—Prosopis chilensis complex, Aliso 9, 483–497 (1979).
M. Manzoor-I-Khuda et al., Pakistan J. Sci. Ind. Res. 11, 1–4 (1968); S. A. Abbas and P. Mison, Prosopol structure: A reinvestigation, ibid. 26, 140–141 (1983): Prosopol = C30H620 = n-Triacontanol.
K. A. Zirvi et al., PM 32, 244–246 (1977).
N. Ahmed and S. Razaq, Chemical investigation of Prosopis glandulosa flowers, Fitoterapia 57, 457 (1986).
V. U. Ahmad and A. Sultana, A terpenoid diketone from the leaves of Prosopisjuliflora, PHYCHEM 28, 278–279 (1989). Prosopidion = C13H20O; Ausbeute äußerst gering: 12,2 mg aus 20 kg Blatt; die wiedergegebene Struktur ist fraglich; ein iononoider Körper scheint mir wahrscheinlicher zu sein.
G. O. Aspinall and C. C. Whitehead, Mesquite gum. I. The 4-O-methylglucuronogalactan core; II. The arabinan peripheral chains, Canad. J. Chem. 48, 3840–3849; 3850–3855 (1970).
P. C. Khasgiwal et al., Prosopis spicigera gum. Physicochemical characters, Indian J. Pharm. 31, 148–152 (1969).
Alicia L. Lamarque et al.,Proximate composition of seed lipid components of some Prosopis (Leguminosae)from Argentinia, J. Sci. Food Agric. 66, 323–326 (1994).
CeciliaMadres AN Pow et al., Aceites de semilla de especies de Prosopisy Prosopidastrum (Leguminosae), An. Asoc. Quim. Argentina 64, 127–138 (1976).
D. H. Whitmoore and L. H. Bragg, Isoymal differentiation between two species of Prosopis, Biochse 7, 299–302 (1979).
R. A. Palacios et al., Prosopis burkartii and its possible hybride origin, Bull. Intern. Group Study Mimosoi-deae No. 19, 146–161 (1991). Einheimisch in Nordchile.
J. G. Rodriguez and Liliana Cardemil, Cell wall proteins in seedling cotyledons of Prosopis chilensis, PHYCHEM 35, 281–286 (1994). Glykoproteine.
EllaWeaker et al., Variability in Prosopis farcta in Israel: anatomical features of the seed, Bot. J. Linn. Soc. 66, 223–232 (1973). Samenmuster von 9 Standorten untersucht. Auffällige Unterschiede in Bau und Verhalten bei Imbibition mit Wasser der Testa.
A. Filipov, Medicinal plants of the Pilagà of Central Chaco, J. Ethnopharmacol. 44, 181–193 (1994).
P. Felker et al., Prosopis pod production. Comparison of North American, South American, Hawaiian and African germ plasm in young plantations, Econ. Bot. 38, 36–51 (1984).
M. L. Harden and Reza Zolfaghari, Nutritive composition of green and ripe pods of honey mesquite (Prosopis glandulosa, Fabaceae), Econ. Bot. 42, 522–532 (1988). Bedeutung als Nahrungs-und Futterpflanzen; Analysen von unreifen und reifen Früchten und Samen; Mineralgehalte; Aminosäurespektren der Proteinhydrolysate; Trypsin-Inhibitoren.
Valeria B. Baiao et al., Caracteristicas quimicas das sementes de Algaroba (Prosopisjuliflora [SW.] DC.) e composifiao aminoacidica concentrado e de um isolado proteico, Arq. Biol. Tecnol. (Brasilien) 30, 275–286 (1987). Die untersuchten Samen enthielten 36% Protein, 5% Lipide, 7% lösl. Kohlenhydrate und 6% Faserstoffe.
A. Marangoni and I. Alls, Composition and properties of seeds and pods of the tree legume Prosopis juliflora DC., J. Sci. Food Agric. 44, 99 —110 (1988). U. a. Analyse des Samenöls, der Samenzucker, der Mineralstoffe, der Samenproteine und ihrer Aminosäuren.
A. N. Monte Negreiros et al., The complete amino acid sequence of the major Kunitz trypsin inhibitor from the seeds of Prosopisjuliflora, PHYCHEM 30, 2829–2833 (1991).
I. S. Thakur, Effect of Prosopis juliflora pollen allergen on monoaminooxidase activity of the rat, Current Sci. 57, 988–990 (1988). In Indien kommen durch dieses P.-Taxon verursachte Pollenallergien vor.
N. Sankhla et al., Ecophysiological studies on arid zone plants. I. Phytotoxic effects of aqueous extracts of Mesquite (Prosopisjuliflora),Current Sci. 34, 612–614 (1965). Die Art wurde in Indien u. a. zur Bekämpfung von Bodenerosion eingeführt und entwickelte sich später in bestimmten Gegenden zum lästigen Unkraut. Sie kann Keimung und Wachstum anderer Xerophyten unterdrücken. Geißen fressen die reifen Früchte, und die Samen keimen nach Darmpassage sehr schnell. Wäßrige Blatt-und Fruchtextrakte hemmen die Samenkeimung der geprüften Arten (3 Compositen, 2 Convolvulaceen, Weizen, Sesamum) mit Ausnahme von Tephrosia incana und Indigofera tinctoria stark; die Hemmstoffe sind hitzestabil.
L. Bravo et al., Composition and potential uses of Mesquite pods (Prosopis pallida): Comparison with Carob pods (Ceratonia siliqua),J. Sci. Food Agric. 65, 303–306 (1994). Pflanze der ausgedehnten Wüsten Perus. Die Früchte werden leider vorläufig kaum genutzt.
NellyPak et al., Analytical study of Tamarugo, an autochthonous Chilean feed, J. Sci. Food Agric. 28, 59–62 (1977). Analysen von grünen und reifen Früchten, Samen und Blättern; an möglicherweise schädlichen Stoffen nur Spuren Saponine in grünen Früchten und in Samen und wenig Lectine in Samen beobachtet; keine Alkaloide und cyanogenen Verbindungen.
E. A. Bell, S. 200 in: J. B. Harborne et al. (1971), 1. c. Bd. XI a, 94; vgl. dazu auch E. A. Bell and P. B. Nunn, Occurrence of diaminopropionic acid and derivatives in the genus Schrankia, PHYCHEM 9, 924 (1970). Abstract eines Vortrags; 5 Species erwähnt, davon nur Sch. roemeriana namentlich aufgeführt.
J. C. Palazzo DE Mello et al., Monomeric flavan-3-als from the stem bark of Stryphnodendron adstringens, PM 59, Supplement Issue 1993, A 607. Untersucht EtOAc-lösliche Fraktion.
B. Tursch et al., J. Org. Chem. 28, 2390–2394 (1963). Sapogenine -B und -F könnten Artefakte sein; Lactonisierung während saurer Hydrolyse.
B. Tursch et al., Bull. Soc. Chim. Belges 75, 26–28 (1966).
B. Tursch et al., ibid. 75, 127–128 (1966). Sapogenin-K ist identisch mit dem durch hydrolytische Lactonöffnung von Sapogenin-F erhaltenen Produkt.
S. K. Adesina et al., Phytochemical investigations of the molluscicidal properties of Tetrapleura tetraptera Taubert,J. African Med. Plants 3, 7–15 (1980). Nachweis von Saponinen (Hämolyse; Schaumtest) in McOH-Extrakten aus frischen Blättern (= A), Blattstielen und dünnen Zweigen (= B), grünen Früchten (= C), Stammrinde (= D), Wurzelrinde (= E) und aus eben abgefallenen reifen Früchten (= F). Orientierende Untersuchungen der Saponine aus F und Nachweis einer cumarinähnlichen Verbindung (= y) in A, B und F und Isolation von y aus F; bei y („umbelliferon and/or ferulic acid“) dürfte es sich um Scopoletin gehandelt haben.
C. O. Adewunmi and P. Furu, Evaluation of aridanin, a glycoside,and aridan, an aqueous extract of Tetrapleura tetraptera fruit on Schistosoma mansoni and S. bovis,J. Ethnopharmacol. 27, 277–283 (1989). Beide sind nicht nur für die Zwischenwirte (Biomphalaria-Schnecken), sondern auch für die verschiedenen Stadien von Schistosoma-Parasiten toxisch.
C. O. Adewunmi et al., Molluscicidal trials and correlation between the presence of Tetrapleura tetraptera in an area and the absence of the intermediate hosts of schistosomiasis and fascioliasis in Southwest Nigeria, J. Ethnopharmacol. 30, 169–183 (1990).
A. Marston and K. Hostettmann, Plant saponins: Chemistry and molluscicidal action, S. 264–286 in: J. B. Harborne and E A. Tomas-Barberan (Eds.), Ecological chemistry and biochemistry of plant terpenoids, Clarendon Press, London 1991. Leguminosae 278–282: Swartgia madagascariensis und simplex, Sesbania sesban,Dolichos kilimandscharicus, Albiria anthelmintica, Tetrapleura tetraptera.
M. Maillard et al., New triterpenoid N-acetylglycosides with molluscicidal activity from Tetrapleura tetraptera Taub., Hely. Chim. Acta 72, 668–674 (1989).
M. Maillard et al., A new triterpenoid compound isolated from fruits of Tetrapleura tetraptera, PM 57, Sonderheft (1991), A74–A75; PHYCHEM 31, 1321–1323 (1992). Oleanolsäurederivate mit OH an C-27 sind selten: Vgl. Praesenegenin in Bd. V, 356, und den Kaffeesäureester von 27-Hydroxyoleanolsäure aus Wurzelrinde von Melianthus comosus (J. M. Koekemoer et al., J. South. Afr. Chem. Inst. 27, 131–136 [1974]).
S. K. Adesina and J. Reisch, A triterpenoidglycoside from Tetrapleura tetraptera fruit, PHYCHEM 24, 3003–3006 (1985). Die Aridanin-Ausbeute betrug 0,14%.
E. E. Essien et al., Quantitative analysis of scopoletin in the fruit of Tetrapleura tetraptera Taub. (Mimosaceae), Sci. Pharm. (Wien) 51, 397–402 (1983). Verschiedene Bestimmungsmethoden lieferten übereinstimmende Resultate.
O. Nagassapa et al., Bull. Chem. Soc. Ethiopia 3, 91–96 (1989): Ex Updates No. 9084 (1990); Eid., JNP 56, 1872–1877 (1993). Aus 3,5 kg Rinde 877 mg Aridanin, 287 mg 16-Hydroxyaridanin, 90 mg Aridanin-6’-glucosid und 195 mg Echinocystsäurenatriumsulfat isoliert.
R. Gmelin and P. Olesen Larsen, Biochim. Biophys. Acta 136, 572–573 (1967). Stereostruktur des Ethyliden-Derivates ermittelt.
R. A. Laid-Law and J. W. W. Morgan, The diterpenes of Xylia dolabriformis, Jcs 1963, 644–650. Zwei Holzmuster untersucht; eines lieferte 4% Petroletherextrakt mit den fünf im Text erwähnten Diterpenen und ß-Sitosterin, und das zweite lieferte 8% Extrakt, aus welchem 42 g Sandaracopimaradienon, 17 g Sandaracopimaradienol, 25 g Sandaracopimaradiendiol und 190 mg eines nicht identifizierten Diterpens, C20H3002 isoliert werden konnten.
A. A. Kumar et al., Indian J. Chem. 14B, 654–656 (1976). Lieferte bei milder Salzsäure-Hydrolyse (—)-Epicatechin und bei energischer Hydrolyse das Anthocyanidin Robinetinidinhydrochlorid; (4–8)-Interflavanbindungen zwischen den drei Bausteinen wurden angenommen.
L. Mester et al., Identification par Rmn i 3 C (= 13C Nmr) dans les feuilles de Xylia xylocarpa de l’acide 5-hydroxypipécolique, nouvel inhibiteur de l’agrégation plaquettaire par la sérotonine, PM 35, 339–341 (1979). Keine Angaben über Ausbeute.
A. P. CercÓS, Actividad antimicrobiana de la vinalina, alcaloide del Vinal (Prosopis ruscifolia Griseb.), Revista Argentina de Agronomia 18, 201–209 (1951). Früchte werden durch Tiere gefressen; nach Darmpassage keimen die nichtverdauten Samen schnell; vgl. dazu auch Prosopis juliflora in Indien [181].
J. C. Oberti y H. R. Juliani, Aislamiento de vitexina de Prosopis ruscifolia Griseb., An. Asoc. Quim. Argentina 59, 101–103 (1971).
J. Parente et al., Aislamiento de cassina en dos especies del genero Prosopis, An. Asoc. Quim. Argentina 60, 527–529 (1972). Cassin aus Rinde von P. nigra (0,022%) und P. ruscifolia (0,012%) isoliert, und nicht identifizierte Nebenalkaloide nachgewiesen; vgl. dazu [129]. Einige davon kommen auch in Rinde von P. kungei und P. pugionata, nicht aber bei P. alba (mehrere Rindenmuster geprüft), vor.
T. R. New, A biology of Acacia, Oxford University Press, Melbourne 1984. Mit Kapiteln: 1. Classification and phylogeny; mit Subkapiteln a) Morphological characters useful in classification mit Inflorescences, Stipules, Foliage,Pods, Seeds and germination (mit aus S. 17 Besprechung der systematischen Bedeutung der freien Samenaminosäuren), Pollen. — b) Chemical taxonomy, 20–23 (Kernholzchemie, Schleimexudatchemie, other chemistry (Cyanogene Verbindungen, Alkaloide, Blattflavonoide). — c) Caryology. — d) Hybridization. — e) Distribution and fossil records. — f) Phylogeny. — 2. Ecology. — 3. Acacias and man, 57–69 (Nutzpflanzen: Gerbrinden, Medizinalpflanzen, Wirtspflanzen für Lackinsekten, Färbepflanzen, Seifenersatz, Parfumeriepflanzen, Faserpflanzen, Bau-und Brennholz, Ziersträucher und -bäume, Pflanzung zur Bodenverbesserung und -stabilisation [Erosionsbekämpfung]). — 4. Acacias and arthropodes (u. a. myrmekophile Arten, Predatoren, Blütenbesucher). — 5. Acacias and other organisms (z. B. Nematoden, Vertebraten, Fungi u. a.). — Appendix I, 110–113: Bentham’s (1875) classification of Acacia. — Appendix II, 114–116: Vassal’s and Pedley’s proposals for subdivision of Acacia. — Appendix Iii, 117 —120: Index to specific/subspecific names of Acacia. —Bibliography, 121–149.
J. Vassal, Apport des recherches ontogéniques et séminologiques à l’étude morphologique,taxonomique et phylogénique du genre Acacia, Thèse Sci. Nat., Université Paul Sabatier, Toulouse 1972. Mit allgemeiner Einleitung von 23 Seiten (Position taxonomique,diagnose et subdivisions du genre Acacia — Biogéographie sommaire des Acacias — Intérêt économique — Myrmécophilie- Bibliographie)und 6 separat paginierten Beiträgen, welche zwischen 1969 und 1972 in Bull. Soc. Hist. Naturelle de Toulouse publiziert wurden, i.e. Contribution à l’étude de la morphologie des plantules d’Acacia — I: Acacias africains, 105,55–111 (1969); II: Acacias américains,Acacias asiatiques, 107, 157–190 (1971); Iii et IV: Acacias insulaires des Océans Indien et Pacifique-Australie,Formose, Iles Maurice et Hawaii; Iii: Les Acacias à phyllodes ou Phyllodineae, 106, 191–276 (1970); IV: Les Acacias bipinnés-Pulchellae, Botryocephalae,Gummiferae, 107, 247–278 (1971); V: Contribution à l’étude morphologique des graines d’Acacia, 107, 191–246 (1971); VI: Schlußbeitrag (in der Dissertation 1–128 paginiert mit dem Titel der Dissertation; er enthält den Vorschlag zur Abänderung der Klassifikation von Acacia und einige nützliche Hinweise: S. 116–117, Place des espèces étudiées dans le nouveau classement proposé; 118–119, Index des figures et planches hors-texte; 119, Index des schémas évolutives et des cartes; 120–123, Index des espèces citées; 124–127, Table des matières; 128, Errata (in I—VI). Auch publiziert ibid. 108, 125–247 (1972).
P. GuInet and J. Vassal, Hypotheses on the differentiation of the major groups in the genus Acacia (Leguminosae),Kew Bull. 32, 509–527 (1978). Besprechung von Entwicklungstendenzen (Merkmalsphylogenie) innerhalb der Gattung und deren Auswertung für eine natürlichere Klassifikation. Besprochen werden: Pollen, Chromosomenzahlen und Karyotypen, Samen, Keimlinge (Kotylen), spätere Jugendstadien (Primärblätter), Stipulae, Blätter, Dorne und Stacheln, Blütenstände, Früchte.
J. D. Carr, The South African Acacias, Conservation Press (Pty) Ltd, Johannesburg 1976. Genaue Beschreibung von 43 Arten, welche anhand von leicht feststellbaren Merkmalen, i.e. Form und Verteilung der Dorne (s.1., i.e. Aculei und Spinae) und der Form der Blütenstände (capitate or spicate), in 7 Gruppen unterteilt werden. Auch Kulturhinweise für jede Art.
L. Pedley, Derivation and dispersal of Acacia (Leguminosae) with particular reference to Australia, and recognition of Senegalia and Racosperma, Bot. J. Linn. Soc. 92, 219–254 (1986). In dieser Arbeit werden auch chemische Merkmale (Holzphenole, Aminosäuren, cyanogene Verbindungen) besprochen.
B. R. Maslin, Should Acacia be divided?, Bull. Igsm 16, 54–76 (1988). Im „Summary“: I consider it inadvisable to undertake any splitting of this vast genus at this time...; vgl. auch Reports on discussions at IGSM meeting No. 6 on the proposal to split Acacia, id., ibid. 15, 108–118 (1987) und hier zitierte Literatur.
D. S. Seigler and J. E. Ebinger, Acacia macracantha, A. pennatula,and A. cochliacantha species complex in Mexico, Syst. Bot. 13, 7–13 (1988).
Yoo Sung Lee et al., Acacia rigidula and related species in Mexico and Texas, ibid. 14, 91–100 (1989). A. bilimekii, A. brandegeana, A. pringlei subsp. pringlei und subsp. californica (= A. californica) und A. rigidula.
H. D. Clarke et al., Acacia farnesiana and related species from Mexico, the Southeastern U.S., and the Caribbean, ibid. 14, 549–564 (1989). Acacia farnesiana var. farnesiana (inkl. A. smalli:) und var. guanacastensis (var. nov.), A. pacensis, A. schaffneri var. schaffneri und var. bravoensis und A. tortuosa.
H. D. Clarke et al.,Acacia constricta and related species from the Southwestern U.S. and Mexico,Amer. J. Bot. 77, 305–315 (1990). Acacia biaciculata, A. constricta, A. glandulifera, A. neovernicosa und A. schottii; die oft mit A. constricta verwechselte A. pacensis gehört zum A. farnesiana-Aggregat.
A. D. Hardy, The distribution of leaf glands in some Victorian Acacias, Victorian Naturalist 29, 26–32 (1912) + 1 Tafel mit 20 Figuren.
R. B. Knox et al., The role of extrafloral nectaries in Acacia, S. 295–307 in: B. E. Juniper and T. R. E. Southwood (Eds), Insects and plant surface, Edward Arnold, London 1986.
Marjorie I. Collins, On the structure of the resin-secreting glands in some Australian plants, Proc. Linn. Soc. N. S. Wales 45, 329–336 (1920). S. 330–333 Leguminosae-Acacia. Sehr verschieden gestaltete Haare; die ein harziges Exkret, das zur Firniß-und Politurbereitung Anwendung findet, produzierende Acacia verniciflua besitzt große, schildförmige Drüsenhaare.
C. J. Pettigrew and L. Watson, Taxonomic patterns in amino acids of Acacia seed globulins, PHYCHEM 14, 2623–2625 (1975).
K. D. Hapner and M. A. Jermyn, Lectin activity in Acacia seeds,Ann. Bot. 48, 89–91 (1981).
J. K. P. Weder and D. R. Murray, Distribution of proteinase inhibitors in seeds of Australian Acacias, Z. Pflanzenphysiol. 103, 317–322 (1981).
D. R. Murray and J. K. P. Weder, Seed proteinase inhibitors of Pulchellae, A. mitchellii Benth. and A. alata R. Br.: Exclusion of A. mitchellii from Pulchellae, Austral. J. Bot. 31, 119–124 (1983).
F. J. Joubert, Purification and properties of the proteinase inhibitors from Acacia sieberiana (paperback Acacia) seed, PHYCHEM 22, 53–57 (1983).
A. H. EL Tinay et al., Serotaxonomic studies on Sudan Acacias, J. Experimental Bot. 30, 607–615 (1979).
Foot’ And Nutrition Paper No. 25, Gum Arabic, 93–95, Fao, Rome 1982. Als Stammpflanze werden zugelassen: Acacia senegal (L.) Willdenow or the related species of Acacia (Fam. Leguminosae). Die hier geforderten Identitäts-und Reinheitsprüfungen dürften nur erstklassige Gummis von A. senegal erfüllen.
J. Vassal, Gummiferous Acacias and gum productivity. Some aspects of current research, Bull. Igsm 13, 30–37 (1985).
M. Mouret, Gummosis in Acacia: Current histological research, Bull. Igsm 13, 38–45 (1985).
J. P. Joselau and G. Ullmann, A relation between starch metabolism and the synthesis of gum arabic, ibid. 13, 46–54 (1985).
Briefings (edited by Constance Holden), Science 254, 192 (1991). Im Beitrag: Sugar sours future for gum arabic. Enzymatische Produktion eines Alternan genannten Saccharose-Polymers; wird für bestimmte Zwecke als Gummi ARABIcUM-Ersatz vorgesehen; liefert die gewünschte Viskosität, mißt allerdings dessen emulgierende Eigenschaften, welche mutmaßlich auf seinem Proteinanteil beruhen.
D. M. W. Anderson, The future of gum arabic as an article of international trade, Bull. Igsm 14, 65–67 (1986).
D. M. W. Anderson and G. Pinto, Variation in the composition and properties of the gum exuded by Acacia karroo Hayne in different African locations, Bot. J. Linn. Soc. 80, 85–89 (1980).
J. M. Petrie, The yellow pigments of Australian Acacias, Biochem. J. 18, 957–964 (1924).
R. Paris, Les pigments flavoniques de diverses espèces d’ Acacia, Bull. Soc. Chim. Biol. 35, 655–660 (1953). Bei dieser Arbeit wurde großer Wert auf genaue botanische Bestimmung des Untersuchungsmaterials gelegt.
E M. Panizo y B. Acebal, An. Real. Soc. Espan. Fis. y Quim. 51B, 623–632 (1955). Es wurden im Mai 1953 in Madrid geerntete köpfchenförmige Blütenstände von Acacia Commun bearbeitet.
H. Thieme und A. Khogali, Isolierung von Apigenin-6,8bis-C-ß-D glucopyranosid aus den Blättern von Acacia farnesiana (L.) Willd., Pharmazie 29, 352 (1974).
Eid., ibid. 30, 736–743 (1975).
E. Malan and D. G. Roux, Flavonoids and tannins from Acacia species, PHYCHEM 14,1835–1841 (1975). Untersuchung des Kernholzes von 2 südafrikanischen Arten, Acacia erioloba (= A. giraffae, Kameeldoring) und A. galpinii (Apiesdoring). Isolation von (+)-Catechin, (+)-Leucofisetinidin und von einem 4 —+ 8-Dimer dieser zwei Flavanole aus ersterer sowie Charakterisierung der reichlich vorhandenen kondensierten Gerbstoffe als Kondensationsprodukte der drei isolierten Verbindungen; Isolierung von fünf Leucoanthocyanidinen (4 stereoisomere Teracacidine [7,8,4’-Trihydroxyflavan-3,4-diole] und [—]-Melacacidin [cis,cis-7,8,3’,4’-Tetrahydroxyflavandiol]) und von drei Methylethern (3-; 7,8-; 7,8,4’-) des Flavonols 3,7,8,4’-Tetrahydroxyflavon aus dem sehr gerbstoffarmen Holz von A. galpinii; Hypothesen über spontane oder enzymatische Bildung von kondensierten Gerbstoffen aus mono-und dimeren Bausteinen.
J. W. Clark-Lewis, Chemistry of Acacia species, Reviews Pure Applied Chem. 12, 33–43 (1962). Struktur und Stereochemie der Leucoanthocyanidine (Teracacidine, Melacacidine, Mollisacacidine); 4-Hydroxypipecolinsäure aus Saft-und Kernholz und aus Blättern verschiedener A.-Arten.
D. G. Roux, The chemistry of wattle heartwood and bark tannins, Chemistry and Industry 1962, 278–281.
D. G. Roux, Identification of anthocyanidins, leucoanthocyanidins and 2: 3-dibydroflavonols in plant tissues, Nature 179, 305–306 (1957). PC-Identifikation der aus Flavan-3,4diolen (Leucoanthocyanidinen) durch Säurebehandlung entstehenden Anthocyanidine D, Cy, Pg, Robinetinidin, Fisetinidin, 3,7,4’-Trihydroxyflavyliumchlorid und 3,7,8,3’,4’-Pentahydroxyflavyliumchlorid (aus Melacacidin). Nachweis von geringen Mengen von ProPg und Prorobinetinidin in Extrakten aus A. mearnsii (als A. mollissima).
D. G. Roux, Biogenesis of condensed tannins from leucoanthocyanidins, Nature 181, 1454–1456 (1958). Untersuchungen mit Holzscheiben von Jungpflanzen (Stamm 7–8 cm Durchmesser) von Schinopsis quebracho-colorado (Quebracho): Abnahme der Gehalte an monomeren Leucofisetinidinen und starke Zunahme der Gehalte an polymeren Leucofisetinidinen von der Peripherie nach dem Zentrum. Ähnliche Verhältnisse bei Acacia melanoxylon; hat in der Splintholzzone zwei isomere monomere Melacacidine und im Kernholz kondensierte Gerbstoffe, die zur Hauptsache 3,7,8,3’,4’-Pentahydroxyflavyliumchlorid liefern. Bei Extraktion ganz frischer Rinde von A. mearnsii im Dunkeln gelang Isolation von monomerem Leucorobinetinidin und Leucofisetinidin, was diese zwei Flavan-3,4-diole als Bausteine des Rindengerbstoffes vermuten läßt. Da bei Black Wattle (A. mearnsi:), Green Wattle (A. decurrens) und Silver Wattle (A. dealbata) Rinden-und Holzgerbstoffe recht verschieden sind, werden für diese Pflanzenteile verschiedene Enzymsysteme für die Gerbstoffbildung angenommen.
D. G. Rouk, Black wattle catechin,Nature 182, 1798 (1958). Bei Kalischmelze liefert der Rindengerbstoff von Acacia mearnsii zur Hauptsache Resorcin und Gallussäure; daneben auch Phloroglucin und Protocatechusäure. Als Phloroglucin-Quelle wurden (+)-Catechin (Stoff G) und (+)-Gallocatechin (Stoff A 2) isoliert; sie sind offensichtlich ebenfalls Gerbstoffbausteine in dieser Rinde; ferner wurde als neuer Naturstoff das Catechin 7,3’,4’,5’-Tetrahydroxyflavan-3-ol (ein Robinetinidol: Stoff H,C15H1406) erhalten.
D. G. Roux and E. Paulus, Isolation of (—)-7,3’,4’ -trihydroxyflavan-3-ol [(—) fisetinidol], a naturally occurring catechin from Black-Wattle heartwood, Biochem. J. 78, 120–123 (1961). Aus 120 g Kernholz von A. mearnsii Fustin und 163 mg (—)-Fisetinidol, C15H1405, isoliert; radiale Verteilung dieses neuen Catechins im Holz von zwei 50jährigen Bäumen ermittelt: Etwa 1% des McOH-Extraktes an der Peripherie und 0,5–0,7% im Zentrum des Kernholzes.
D. G. Roux et al., ibid. 78, 834–839 (1961). Vgl. Bd. XI a, 243–244 und 252 [= Ref. 50a].
D. G. Roux and E. Paulus, Isolation of (—)-butin and butein from wattle heartwoods,Biochem. J. 80, 62–63 (1961). Beschreibung der Isolation des Flavanons (—)-Butin aus Kernholz von A. mearnsii (Black-Wattle; 100 mg aus 9,9 kg Holz) und A. pycnantha (Golden-Wattle; 100 mg aus 5,1 kg Holz) und des Butin-Nachweises im Holz von A. dealbata und A. decurrens (PC). Isolation des entsprechenden Chalkons Butein aus Kernholz von A. pycnantha (8 mg aus 5,1 kg) und Erwähnung dessen Nachweises (PC) in Holzextrakten von A. dealbata, decurrens und mearnsii.
D. G. Roux and S. E. Drewes, Structural factors associated with redness induced in certain condensed tannins by sunlight and heat, Chemistry and Industry 1965, 1442–1446. Hölzer mit hohem Anteil an PCy-und PD-Gerbstoffbausteinen (OH in 5- und 7-Position) tendieren am stärksten zur Rotfärbung. Neigung zur Rotfärbung bei Acacia-Hölzern: pycnantha > dealbata > decurrens > mearnsii.
J. J. Botha et al., Condensed tannins: Condensation mode and sequence during formation of synthetic and natural triflavanoids, Jcs Chem. Commun. 1979, 510–512. Säurekatalysierte (0,1 N HC1; Zimmertemp.) Kondensation von (+)-Mollisacacidin (= Fisetinidol-4u-ol) mit dem 4 8-gebundenen Dimer all-trans-(−)Fisetinidol —(+)-Catechin findet nur in 6-Stellung des (+)-Catechins statt und liefert (4α →+ 6)- und (4 β → 6)-gebundene Trimere. Die zwei synthetisch bereiteten Trimeren waren mit früher aus Kernholz von Colophospermum mopane isolierten Trimeren identisch.
D. G. Roux and D. Ferreira, Rationalization of divergent condensation sequences in flavanoid oligomeriration, S. 221–235 in: E. Van SuMere and P. Y. Lea (Eds), The biochemistry of plant flavanoids, Clarendon Press, Oxford 1985 (Ann. Proc. Phytochem. Soc. Europe 25: 1985). Besprechung von Acacia-Profisetinidin-Biflavanoiden und -Triflavanoiden (4 → 6- und 4 → 8-Verknüpfung), von heterogenen PA-Di-und -Trimeren aus Guibourtia coleosperma (ein 3,5,3’,4’-Tetrahydroxystilben + ein oder zwei Leucoguibourtinidine) und von Flavan-Dimeren und -Trimeren vom Bi-und Triphenyltypus, welche auf das Prosopis-Catechin Mesquitol (= Prosopin) basiert sind, und 5 → 5- und 5 → 6-Verknüpfungen haben.
D. S. Seigler et al., Tannins from four common Acacia species of Texas and northeastern Mexico, Econ. Bot. 40, 220–232 (1986).
D. S. Seigler and J. E Hernandez, Comparative tanning ability of extracts from four North American species of Acacia, J. Amer. Leather Chemists’ Assoc. 84, 315–321 (1989).
J. Z. A. MuGedo and P. G. Waterman, Sources of tannin:Alternatives to wattle (Acacia mearnsii)among indigenous Kenyan species, Econ. Bot. 46, 55–63 (1992).
S. M. Hussein Ayoub, Molluscicidal properties of Acacia nilotica, PM 46, 181–183 (1982); id., Fitoterapia 54, 189–192 (1983). Tans aus Früchten und Rinden von A. nilotica subsp. adstringens (= A. adansonii), subsp. nilotica und subsp. tomentosa enthalten 55–57% Gerbstoff.
S. M. Hussein Ayoub, Polyphenolic molluscicides from Acacia nilotica, PM 50, 532 (1984); Effect of the galloyl group on the molluscicidal activity of tannins, Fitoterapia 55, 343–345 (1984). Leider sind die Gallussäureester des Epigallocatechins außerordentlich labile Stoffe; in wäßriger Lösung verlieren sie innerhalb von 6 Stunden ihre Toxizität für Biomphalaria-Arten; auch Tan verliert in wäßriger Lösung seine Aktivität schnell. In Laboratorium-Versuchen wurde gezeigt, daß freie Catechine und Leucoanthocyanidine inaktiv sind. Nur Catechingallate und Galloylglucosen (EtOAc-löslicher Anteil von käuflichem Acidum tannicum) wirkten stark molluscizid. Eine brauchbare Methode zur Stabilisation der aktiven Polyphenole und der aktiven Komponenten von Tan wurde noch nicht gefunden.
S. A. Khalid et al., (+)-Catechin-5 galloyl ester as a novel natural polyphenol from the bark of Acacia nilotica of Sudanese origin, PM 55, 556–558 (1989).
S. M. Hussein Ayoub, Flavanol molluscicides from Sudan Acacias, Intern. J. Crude Drug Res. 23, 87–90 (1985).
S. M. Hussein Ayoub and L. K. Yankov, Molluscicidal properties of the Sudan Acacias, Fitoterapia 58, 363–366 (1987).
W H. O. Ernst, Seasonal variation in phenolics in several savanna tree species in Botswana, Acta Bot. Neerl. 40, 63–74 (1991).
J. W. Clark-Lewis and I. Dainis, Teracacidin and isoteracacidin from Acacia obtusifolia and A. maidenii heartwood; Phenolic hydroxylation patterns of heartwood flavonoids characteristic of sections and subsections of the genus Acacia, Austral. J. Chem. 20, 2191–2206 (1967).
Mary D. Tindale and D. G. Roux, A phytochemical survey of the Australian species of Acacia, PHYCHEM 8, 1713–1727 (1969). Kernholz und Rinden von 61 Species untersucht.
J. W. Clark-Lewis and L. J. Porter, Phytochemical survey of the heartwood flavonoids of Acacia species from arid Zones of Australia, Austral. J. Chem. 25, 1943–1955 (1972). 14 Arten untersucht.
Mary D. Tindale and D. G. Roux, An extended phytochemical survey of Australian species of Acacia: Chemotaxonomic and phylogenetic aspects, PHYCHEM 13, 829–839 (1974). Jetzt gesamthaft 400 Species auf Hydroxylierungsmuster ihrer Kernholz-Flavanole und -Flavonoide untersucht.
Mary D. Tindale and D. G. Roux, Phytochemical studies on the heartwoods and barks of African and Australian species of Acacia, Boissiera 24, 299–305 (1975). 5 afrikanische Vertreter der Gummiferae (= subgen. Acacia sensu Vassal) und 7 Vertreter der Vulgares (= subgen. Aculeiferum sensu Vassal) untersucht.
A. S. Seneviratne and L. Fowden, The amino acids of the genus Acacia, PHYCHEM 7, 1039–1045 (1968).
K. Ito and L. Fowden, New characterizations of amino acids and y glutamyl peptides from Acacia georginae seeds, PHYCHEM 11, 2541–2545 (1972).
Christine S. Evans, M. S. Qureshi and E. A. Bell, Free amino acids in seeds of Acacia species, PHYCHEM 16, 565–570 (1977).
Christine S. Evans et al., N-Methyltyramine in Acacia seeds, PHYCHEM 18, 2022–2023 (1979).
Christine S. Evans et al., 2-Amino-4-acetylamino acid, 2,4-diaminobutyric acid and 2-amino-6-N-oxalylureidopropionic acid (oxalylalbizziine) in seeds of Acacia angustissima, PHYCHEM 24, 2273–2275 (1985).
P. Guinet, J. Vassal, Christine S. Evans and B. R. Maslin, Acacia (Mimosoideae): Composition and affinities of the series Pulchellae Benth., Bot. J. Linn. Soc. 80, No. 1, 53–68 (1980).
Christine S. Evans et al., Non protein amino acids in seeds of neotropical species of Acacia, PHYCHEM 32, 123–126 (1993).
B. Levenberg and R. Gmelin, Isolation of L-arginine from seeds of Acacia sieberiana, Suomen Kemistilehti B34, 101 (1961).
R. Gmelin, Freie Aminosäuren der Samen von Acacia willardiana. Isolierung von Willardiin, einer neuen pflanzlichen Aminosäure, vermutlich L-Uracil-[ß-[u-aminopropionsäure)]-(3), Hoppe-Seyler’s Z. Physiol. Chem. 316, 164–169 (1959).
A. Kjaer et al., Structure and synthesis of the plant amino acid willardiine [3-(1-uracyl)-L-alanineJ, Acta Chem. Scand. 15, 1193–1195 (1961).
R. Gmelin und P. K. Hietala, S-[ß-Carboxy-isopropyl]-L- ystein, eine neue Aminosäure aus den Samen von Acacia millefolia und A. willardiana, Hoppe Seyler’s Z. Physiol. Chem. 322, 278–282 (1960).
A. Kjaer and P. Olesen Larsen, Structure and synthesis ofalbizziine (L-2-amino3-ureidopropionic acid), an amino acid from higher plants, Acta Chem. Scand. 13, 1565–1574 (1959).
R. Gmelin et al., N-Acetyl-L-djenkolic acid, a novel amino acid isolated from Acacia farnesiana Willd., PHYCHEM 1, 233–236 (1962).
J. L. Van Der Baan et al., Biosynthesis of L-2,3-diamino propionic acid, Jcs Perkin I 1984, 2809–2813.
A. I. Virtanen and Sigrid Kari, 5-Hydroxy piperidine-2-carboxylic acid in green plants, Acta Chem. Scand. 8, 1290–1291 (1954). Substanz C papierchromatographisch bei Acacia-Arten und in der Palme Rhapis flabelliformis nachgewiesen; aus letzterer isoliert und genauer untersucht.
A. I. Virtanen and Sigrid Kari, 4-Hydroxypiperidine-2-carboxylic acid in green plants, ibid. 9, 170–171 (1955). 180 mg reine Substanz B aus 656 g Frischpflanze von Acacia pentadenia isoliert und Struktur geklärt; diese Art enthält im „Kraut“ neben Stoff B auch Stoff C; beide wurden papierchromatographisch ebenfalls in A. retinodes und in Strelitzia reginae (Strelitziaceae-Zingiberales) nachgewiesen. Albizia lophantha (Ingeae) enthielt nur 4-Hydroxypipecolinsäure.
J. W. Clark-Lewis and P. I. Mortimer, Occurrence of 4-hydroxypipecolic acid in Acacia species, Nature 184, 1234–1235 (1959).
Eid., The 4-bydroxypipecolic acids from Acacia species, and its stereoisomers, Jcs 1961, 189–201. Vgl. bezüglich Stereostruktur auch Ref. [33].
A. I. Virtanen and R. Gmelin, On the structure of 4-hydroxypipecolic acid isolated from green plants, Acta Chem. Scand. 13, 1244–1246 (1959).
J. N. Shoolery and A. I. Virtanen, Molecular conformation of 4- and 5-hydroxypipecolic acids, ibid. 16, 2457–2458 (1962).
I. Murakoshi et al., Isolation of (—)-trans-4-hydroxypipecolic acid from the young leaves of Acacia mollissima, J. Pharm. Soc. Japan 89, 1723–1725 (1969).
C. J. Webb et al., Flora of New Zealand, Vol. IV. Naturalised Pteridophytes, Gymnosperms and Dicotyledons, Botany Division, D.S.I.R., Christchurch 1988. Racosperma (... previously... treated in Acacia), S. 703–710: Nur 13 echt eingebürgerte Arten behandelt; davon haben sechs bipinnate Blätter, i.e. A. baileyana, dealbata, decurrens, elata, mearnsii und parramattensis, und sieben Phyllodien, i.e. floribunda, longifolia, melanoxylon, Paradoxa, podalyriaefolia, stricta und verticillata. Die vielen nur als Ziergewächse, als Windschutz und für Brennholz kultivierten Arten werden in dieser Flora nicht behandelt. N. B. Ich führe alle Xacosperma-Arten Pedley’S als Acacia-Arten auf.
E. P. White, Alkaloids of the Leguminosae. Part. IX. Isolation of ß phenylethylamine from Acacia species, New Zealand J. Sci. Technol. 25B, 139–142 (1944); Part XIII. Isolation of tryptamine from some Acacia species, ibid. 25B, 157–162 (1944); Part Xxii. Additions and corrections, ibid. 33B, 54–60 (1951); Part Xxiii. The occurrence of N-methyl-13phenylethylamine in Acacia prominens A. Cunn., ibid. 35B, 451–454 (1954); Part Xxvi. Examination of further legumes, mainly Lupinus and Acacia, ibid. 38B, 718–725 (1957). Keine oder nur ganz unbedeutende Mengen von Alkaloiden (< 0,02%) wurden beim untersuchten Material der folgenden Taxa beobachtet: A. acinacea Lindley (vgl. aber Tabelle 21), baileyana F. Muell., decurrens Willd., dealbata Link, mearnsii (als mollissima), drummondii Bentham, elata A. Cunn., falcata Willd., leprosa Sieb., linearis Sims (= longissima Wendl.), melanoxylon R. Br., pycnantha Bentham, retinodes Schlecht., saligna Wendl., stricta Willd., verticillata Willd. und vestita Ker Gawler (in Xxii korr.: war A. howittii F. Muell.): Alle in IX. A. armata R. Br., discolor Willd., elongata Sieb., myrtifolia Willd., pruinosa A. Cunn. (vgl. aber Tabelle 21), verniciflua A. Cunn.: Diese in Xxii. A. cyanopbylla Lindley, decora Reichb., flexifolia A. Cunn., linifolia Willd. und rupicola F. Muell.: Diese in Xxvi.
J. S. Fitzgerald, The occurrence of phenylethylamine derivatives in Acacia spec., Austral. J. Chem. 17, 160–162 (1964).
J. S. Fitzgerald, Cinnamoylhistamine, the alkaloid of Acacia argentea and A. polystachya, Austral. J. Chem. 17, 375–378 (1964).
B. J. Camp and M. J. Norwell, The phenylethylamine alkaloids of native range plants, Econ. Bot. 20, 274–278 (1966).
S. R. Johns et al., Nb-Methyltetrahydroharman from Acacia complanata A. Cunn. ex Benth., Austral. J. Chem. 19, 1539–1540 (1966).
D. B. Repke et al., Alkaloids of Acacia baileyana, JNP 36, 211–213 (1973).
D. B. Repke, The histamine amides of Acacia longifolia, JNP 38, 101–105 (1975).
S. K. W. Khalil and Y. M. Elkheir, Dimethyltryptamine from the leaves of certain Acacia species of Northern Sudan, JNP 38, 176–177 (1975).
Lucie A. Fikenscher, Het voorkomen van nicotine in het genus Acacia, Pharm. Weekblad 95, 233–235 (1960).
M. G. Ettlinger et al., Proacacipetalin and acacipetalin, Jcs Chem. Commun. 1977, 952–953. Genuin enthalten die zwei durch Rimington untersuchten Taxa, A. sieberiana var. woodii und A. stolonifera, Proacacipetalin; Beschreibung seiner Isomerisierung (Wanderung der Doppelbindung) zu Acacipetalin und seiner Epimerisierung in Epiproacacipetalin
J. W. Jaroszewski and M. G. Ettlinger, Vicinal 13 C- 13 C-coupling constants as a configurational probe: Stereochemistry of the base-cataliZed double bond shift in proacaci petalin, J. Org. Chem. 48, 883–884 (1983).
D. S. Seigler et al., Dihydroacacipetalin - A new cyanogenic glucoside from Acacia sieberiana var. woodii, PHYCHEM 14, 1419–1420 (1975). Neben Hauptglucosid Proacacipetalin nachgewiesen.
E Nartey et al., Proacaciberin,a cyanogenic glycoside from Acacia sieberiana var. woodii, PHYCHEM 20, 1311–1314 (1981). Eines der Nebenglykoside von Proacacipetalin (= 80–98% der cyanogenen Glykoside) aus getrockneten Hülsen (ohne Samen) isoliert (Ausbeute nicht erwähnt), und als 6’-Arabinosid von Proacacipetalin charakterisiert; Biose = Vicianose (Ara-[1 -+ 6]-Glc); vgl. auch L. Brimer et al., PM 39, 275 (1980).
L. Brimer et al.,Structural elucidation and partial synthesis of 3-hydroxyheterodendrin, a cyanogenic glucoside from A. sieberiana var. woodii, PHYCHEM 20, 22212223 (1981). 5 mg aus 1 kg getrockneten Hülsen isoliert.
L. Brimer et al., 2-ß-D-Glucopyrano yl-2-methylpropanol from Acacia sieberiana var. woodii, PHYCHEM 21, 2005–2007 (1982). Ca. 15 mg aus 1 kg getrockneten Hülsen erhalten.
S. B. Christensen et al., 1–13-Vicianoyl-(S)-2-methylbutyrate, a 1-O-acylglycoside from Acacia sieberiana var. woodii, PHYCHEM 21, 2683–2685 (1982). 80 mg aus 1 kg getrockneten Hülsen erhalten.
J. W. JaroszewsKI, Heterodendrin in Acacia spp., JNP 49, 927–928 (1986). Aus lufttrockenen Blättern (bei Pretoria, Südafrika, geerntet) isoliert. 90 g A. hebeclada lieferten 600 mg eines 9: 1-Gemisches von Proacacipetalin + Heterodendrin; aus 95 g A. giraffae 300 mg eines 6:1-Gemisches der zwei Glucoside; Glucosid-Gemische durch Hplc aufgetrennt.
D. S. Seigler et al., Cyanogenesis in Acacia farnesiana, PHYCHEM 18, 1389–1390 (1979).
D. S. Seigler et al., Cyanogenic glycosides from four Latin American species of Acacia, Biochse 11, 15–16 (1983). 6 Arten von Argentinien, A. albicorticata Burkart, bonariensis Gill., caven Mol., furcatispina Burkart, praecox Griseb. und visco Lor. ap. Gris., wurden wiederholt geprüft, aber nie cyanogen befunden.
D. S. Seigler et al., Acacipetalin in Acacia constricta from North America, PHYCHEM 15, 219–220 (1976). Die untersuchten jungen Zweige und Blätter stammten von einem Exemplar im „Desert Botanical Garden, Phoenix, Arizona“.
D. S. Seigler et al., Acacipetalin from six species of Acacia of Mexico and Texas, PHYCHEM 17, 445–446 (1978).
J. B. Secor et al., Detection and identification of cyanogenic glycosides in six species of Acacia, PHYCHEM 15, 1703–1706 (1976). Material von verschiedenen Arboreta in Kalifornien und von Dr. Mary D. Tindale aus Australien erhalten.
B. R. Maslin et al., Cyanogenesis in Acacia pachyphloia, PHYCHEM 24, 961–963 (1985).
Wendy K. Svendsen et al., Cyanogenesis in Acacia sutherlandii, PHYCHEM 26, 1835–1836 (1987).
E. E. Conn, Cyanogenesis in Acacia subgenus Aculeiferum, PHYCHEM 28, 817–820 (1989).
D. H. Janzen et al., Seasonal constancy of intro population variation of HCN-content of Costa Rican Acacia farnesiana leaves, PHYCHEM 19, 2022–2023 (1980).
L. Brimer et al., Cyanogenesis in Acacia cochliacantha, Bull. Igsm 15, 88–99 (1987).
J. Aronson and R. J. Nash, Infrequent cyanogenesis in Acacia caven and general notes on yanogenicglycoside data in subgenus Acacia, Bull. Igsm 17, 97–110 (1989).
J. Aronson, Preliminary observations on the cyanogenic properties of five populations of Acacia caven and four additional American species of subgenus Acacia, Bull. Igsm 18, 87–97 (1990).
J. Aronson and C. Ovalle, Report on a study of the natural variability, biogeography and potential for genetic improvement of Acacia caven, Bull. Igsm 17, 111–121 (1989). Und hier zitierte Literatur.
S. S. Rehr et al., Chemical defence in Central American non-ant-acacias, J. Animal Ecology 42, 407–416 (1973).
D. S. Seigler and J. E. Ebinger, Cyanogenic glycosides in ant-acacias of Mexico and Central America, The Southwestern Naturalist 32, 499–503 (1987).
D. A. Jones, Cyanide and coevolution, S. 509–516 in: B. Vennesland et al. (Eds), Cyanide in biology (1981), 1. c. Bd. Vii, 36. Acacia auf S. 513–514. Der Mutualismus Acacia-Ameisen kann für die Pflanze auch nachteilig sein, denn gewisse ameisenfressende Affen (Cebus capucinus) richten große Zerstörungen an, um sich der obligaten Acacienameisen, Pseudomyrmex belti, zu bemächtigen.
D. H. Jan-Zen, The defenses of legumes against herbivores, S. 951–977 (Iii Ant-plants, 959–963) in: PoLhill-Raven 1981.
J. Prasad et al., Hydrocyanic acid poisoning in grazing sheep and goat on Acacia leucophloea (Retinja),Indian Veterinary J. 54, 748–751 (1977). Ermittelte Hcngehalte (ppm/TG): Grüne Hülsen 600, alte Blätter 1094, junge Blätter 400; Samen waren nicht cyanogen; auch die gleichzeitig geprüften Früchte von A. nilotica subsp. indica (= A. arabica auctt.) waren nicht cyanogen; Eid., Investigation on in vitro liberation of HCN from Acacia leucophloea pods, ibid. 58, 223–226 (1981). N. B. Die Autoren verwenden für dieses Taxon die Trivialnamen Reunja und Safed Kikar. In Wealth OF India fehlt der Trivialname Reunja; es werden nur Safed Babul, Safed Kikar und 9 weitere Volksnamen für A. leucophloea erwähnt. Bei Kritikar, Basu and AN (1933, 1. c. Bd. I, 38) werden auf S. 925 für A. leucophloea neben vielen anderen Volksnamen Reunja, Safedbabul und Safedkikar aufgeführt.
B. R. Maslin et al., Cyanogenesis in Australian species of Acacia, PHYCHEM 27, 421–428 (1988).
P. G. Forster et al.,Labdane diterpenes from an Acacia species, PHYCHEM 24, 2991–2993 (1985). 220 g getrocknetes Material (Leaves and terminal branches) lieferte über 15% Etherextrakt; aus ihm wurden die erwähnten neutralen und sauren Diterpene isoliert.
D. H. S. Horn and J. A. Lamberton, Long-chain ß-diketones from plant waxes, Chemistry and Industry 1962, 2036–2037.
D. H. S. Horn et al., The composition of Eucalyptus and some other leaf waxes, Austral. J. Chem. 17, 464–476 (1964). Auch Analyse der Alkanfraktionen des Wachses von A. baileyana (7% Alkane im Wachs) und A. podalyriaefolia (1,3% Alkane im Wachs); bei beiden Taxa waren C27 und C29 Hauptalkane.
D. H. S. Horn and J. A. Lamberton, The occurrence of 11,12-dehydroursolic lactone acetate in Eucalyptus waxes, Austral. J. Chem. 17, 477–480 (1964). Neben Eucalyptuswachsen auch Blattwachse von A. suaveolens und A. iteaphylla analysiert.
J. Vassal, La plantule d’ Acacia albida Del. (Faidherbia albida (Del.) A. Chev. J, Bull. Soc. Hist. Nat. Toulouse 103,583–589 (1967).
H. I. Joly, Population genetics of Acacia albida (= Faidherbia albida),Bull. Igsm 19, 86–95 (1991). Populationen aus Burkina Faso, Kamerun, Mali, Niger und Zimbabwe untersucht.
J. S. Quedraogo et D. Y. Alexandre, Distribution des principales espèces agroforestières à Watinoma, territoire du plateau centrale burkinabé, une résultante de contraintes écologiques et anthropiques, J. Agric. Trad. Bot. Appl., N. S. 36 (1), 101–111 (1994). Butyrospermum paradoxum (Karité) und Faidherbia albida (usages: fourrage, médicaments, bois).
B. R. Maslin et al., Cyanogenic Australian species of Acacia: A preliminary account of their toxicity potential, Australian Centre for Internat. Agric. Res. Proceedings No. 16, 107–113 (1987). Es wird davon ausgegangen, daß frische Blattmuster, welche spontan 200 ppm oder mehr HCN liefern, potentiell toxisch sind; das entspricht etwa 7,5 gmol HCN pro Gramm Frischblatt; fehlt in Blättern das spezifische cyanoglucosid-spaltende Enzym, dann dürften sie i. d. R. weniger giftig sein, auch wenn sie reichlich cyanogenes Glucosid enthalten.
K. A. Dastlik et al., Austral. J. Chem. 44, 123–127 (1991).
R. H. Hammer and J. R. Cole, Phytochemical investigation of Acacia angustissima, J. Pharm. Sci. 54, 235–239 (1965).
S. S. Suarez et al., Flavonoids en Acacias Argentinas, An. Asoc. Quim. Argentina 70, 647–649 (1982).
S. E. Drewes and D. G. Roux, A new flavan-3,4-diol from Acacia auriculiformis by paper ionophoresis, Biochem. J. 98, 493–500 (1966); Chemistry and Industry 1965, 1342.
R. Sahai et al., PHYCHEM 19, 1560–1562 (1980). Auch Spinaste-rin isoliert; Auriculosid-Ausbeute: 218 mg aus 1,9 kg.
S. B. Mahato et al., PHYCHEM 28, 207–210 (1989).
S. K. Uniyal et al, JNP 55, 500–502 (1992).
S. B. Mahato et al., Tetrahedron 48, 6717–6728 (1992).
A. AgarwAL and P. K. K. Nair, Free and protein-bound amino acids of pollen of Acacia auriculaeformis, Grana 28, 155–157 (1989). Dieser Acacia-Pollen ist wertvolle Bienennahrung; auch kurze Erwähnung der human-allergenen Bedeutung dieses Pollens.
L. Y. Foo, Condensed tannins: Co-occurrence of procyanidins, prodelphinidins and profisetinidins in the heartwood of Acacia baileyana, PHYCHEM 23, 2915–2918 (1984).
Shirley C. Churms and A. M. Stephen, Molecular structure of the polysaccharide exudate from Acacia baileyana F. Muell., Carbohydrate Res. 45, 291–298 (1975).
B. J. Camp and C. M. Lyman, Isolation of N-methyl beta phenylethylamine from Acacia berlandieri, J. Amer. Pharm. Assoc. 45, 719–721 (1956); B. J. Camp and Joan A. Moore, A quantitative method for the alkaloid of Acacia berlandieri, ibid. 49,158–160 (1960). Für getrocknete Blätter wurden Gehalte von 0,66% (Mai) bis 0,28% (September) ermittelt.
B. J. Camp et al., The chemistry of the toxic constituents of Acacia berlandieri, Ann. New York Acad. Sci. 111, Art. 2, 744–750 (1964). Blätter enthalten zwei weitere sympathomimetische Amine, Tyramin und N-Methyltyramin.
H. R. Adams and B. J. Camp, The isolation and identification of three alkaloids from Acacia berlandieri, Toxicon 4, 85–90 (1966). Tyramin, N-Methyltyramin, Hordenin.
S. K. Nigam et al., J. Sci. Industr. Res., India 21B, 345 (1962).
R. Banerjee and S. K. Nigam, Chemistry of Acacia concinna and A. caesia bark, J. Indian. Chem. Soc. 57, 1043–1044 (1980).
E. Malan et al., A novel doubly-linked proteracacinidin analogue from Acacia caffra, Tetrahedron Letters 35, 7415–7416 (1994).
J. W. Clark-Lewis and W. Nair, Austral. J. Chem. 17, 1164–1169 (1964).
D. M. W. Anderson and A. C. Munro, Carbohydrate Res. 12, 9–22 (1970).
E. V. Brandt et al., vide Ref. [7] auf S. 227–228 in Bd. XI a.
D. E. Hathway and J. W. T. Seakrns, Enzymic oxidation of catechin to a polymer structurally related to some phlobatannins, Biochem. J. 67, 239–245 (1957).
V. H. Deshpande and A. D. Patil, Indian J. Chem. 20B, 628 (1981).
M. Nierenstein, On the presence of maclurin in the sapwood of the cutch-producing Acacias, J. Indian Chem. Soc. 8,143–145 (1931). N. B. Nierenstein verteidigte in jener Zeit eine abweichende Formel for Catechin (B-Ring in 4-Position, nicht in 2-Position) und faßte das Maclurin als oxidatives Spaltprodukt auf.
R. K. Hulyalkar et al., J. Indian Chem. Soc. 33, 681–683 (1956); 36, 31–34 (1959).
A. Agarwal and P. L. Soni, Indian J. Chem. 27B, 55–58, 1093–1101 (1988).
J. Aronson, Evolutionary biology of Acacia caven: Intraspecific variation in fruit and seed characters, Ann. Missouri Bot. Garden 79, 958–968 (1992).
S. Mukherjee and A. N. Srivastava, The structure of Acacia sundra gum. I. Nature of the sugars present and structure of aldobiouronic acid, J. Amer. Chem. Soc. 80, 2536–2538 (1958); II. The structure of degraded gum, Proc. Indian. Acad. Sci. 50A, 374–379 (1959); vgl. auch A. N. Srivastava, CA 58, 6911 (1963).
G. L. Gupta and S. S. Nigam, PM 19, 55–62 (1970/71).
I. P. Varshney et al., Oligo-and polysaccharides from the seeds of Acacia concinna DC., Indian J. Chem. 14B, 638–639 (1976).
I. P. Varshney and R. Pal, Study of saponins and oligosaccharides from Acacia concinna DC. pods, J. Indian Chem. Soc. 53, 153–155 (1976).
T. Sekine et al., (+)-Acacialactam, a new seven-membered lactam from seeds of Acacia concinna, Chphbul 37, 3164–3165. 32 mg aus 200 g Samen erhalten und als 3,7-Dimethyl-7-vinyl-2,5,6,7-tetrahydro-1H-azepin-2-on aufgefaßt.
M. F. Fox et al., Tetrahedron Letters 33, 7425–7428 (1992). Synthetische Versuche zeigten, daß Acacialactam nicht zyklische, sondern aliphatische Struktur besitzt und ein Amid, nicht ein Lactam ist.
M. Carda et al., Tetrahedron Letters 35, 3359–3360 (1994). Bestätigung der in [149] vorgeschlagenen Acacialactam-Struktur (vgl. Abb. 38).
L. Weil, Beitrage zur Kenntnis der Saponinpflanzen und ihrer Verbreitung, Arch. Pharm. 230, 363–373 (1901). Acacia concinna, 368–369; S. 372 Hinweis auf vorteilhafte Eigenschaften von Saponinen gegenüber Seifen als Waschmittel.
J. Gedeon, Arch. Pharm. 288, 417–418 (1955).
I. P. Varshney and K. M. Shamsuddin, The Sapogenin of Acacia concinna DC. pod and the constitution of acacic acid, Tetrahedron Letters 1964, 2055–2058. Acaciasäure ist ebenfalls als Sapogenin von Rinde und Samen von Acacia intsia, von Rinde von Albizia lebbeck, und von Samen von Albizia odoratissima und stipulata bekannt.
Eid., Absolute structure of acacic acid, Bull. Chem. Soc. Japan 43, 3830–3840 (1970). Acaciasäure ist 16a,21ß-Dihydroxyoleanolsäure.
I. P. Varshney and S. C. Sharma, Indian J. Appl. Chem. 32, 69–71 (1969). Aus Samen ein Acacinin genanntes Saponingemisch isoliert.
I. P. Varshney et al., Indian J. Chem. 24B, 228–229 (1976). Acacinin in Acacinin-A, F 170–172°, und Acacinin-B aufgeteilt. Teilstruktur von A: Acaciasäure + verschiedene Monosen.
S. C. Sharma and S. Walia, Sonuside A, a new glycoside from Acacia concinna beans without seeds, Current Sci. 46, 382–384 (1977). Auch 0,02% freie Acaciasäure isoliert.
A. S. R. Anjaneyulu et al., Indian J. Chem. 15B, I —6 (1977). Nach Hydrolyse der Totalsaponine aus 10 kg samenfreien Früchten 2,1 g Stoff B (= Acaciasäurelacton), 700 mg Stoff D (= Machaerinsäure), 400 mg Stoff A (= Sapogenin-B) + Stoff C (Acaciasäureester) isoliert.
Eid., Structure of acacigenin-B, a novel triterpene ester isolated from Acacia concinna, PHYCHEM 18, 463–466 (1979). Umbenennung von Stoff C in Acacigenin-B und Strukturvorschlag: Acaciasäure-21-ester; eine tetrahydrofuranoide, dienoide Monoterpensäure als Säurekomponente vorgeschlagen.
Eid., PHYCHEM 18, 1199–1201 (1979). Aus Sapogeningemisch noch das 3-Acetat von Acaciasäurelacton und ein Nortriterpen (C-28 fehlt; könnte Hydrolysenartefakt sein), Acacidiol, isoliert.
Eid., Tetrahedron 35, 519–525 (1979). Umlagerungen von Acaciasäurelacton, Machaerinsäurelacton (= Sapogenin-B) und Echinocystsäuremethylester.
Vivian Lou et al., JNP (Lloydia) 28, 207–208 (1965). Material von Taiwan untersucht.
H. R. Arthur et al., Austral. J. Chem. 20, 811–813 (1967).
H. D. Clarke et al., vide Ref. [10] auf S. 332 und Besprechung von fakultativer Cyanogenese auf S. 291.
M. H. Saeedi-Ghomi et al., Some constituents of Acacia constricta, Rev. Latinoamer. Quim. 14, 148–149 (1984).
J. B. Harborne, Gosypetin and herbacetin as taxonomic markers in higher plants, PHYCHEM 8, 177–183 (1969). „In a survey of legume leaves“ (Arten nicht erwähnt) „gossypetin was only detected once, in A. constricta Benth.”
E. V. Brandt et al., Jcs Chem. Commun. 1971, 116–117; 1972, 392–393; Jcs Perkin I 1981, 1879–1883. Crombenin ist das erste Spiropeltogynoid.
I. C. Du Preez and D. G. Roux, Novel flavan-3,4-diols from Acacia cultriformis, Jcs 1970C, 1800–1804.
H. Gillet, Un Acacia australien à la conquète des dunes de Libye, J. Agric. Trad. Bot. Appl. 25, 245–255 (1978). Sehr polytypisches Taxon, das sich zur Anpflanzung in Dünen in Meeresnähe gut eignet. Liefert auch Brennholz und ist gute Bienenpflanze. Junge Phyllodien sind nicht cyanogen und könnten als Futter verwendet werden, wenn sie durch Vieh gefressen werden.
E. Imperato, PHYCHEM 17, 822–823 (1978). Beide sind gelbe Blütenpigmen- te.
A. J. Carlson et al., The composition of Acacia cyanophylla gum, Jcs 1955, 269–273.
M. C. Rutherford and L. W. Powrie, Allelochemical control of biomass allocation in interacting shrub species, J. Chem. Ecol. 19, 893–906 (1993).
G. Tappi, A. Spada e R. Cameront, Sui pigmenti flavonici del polline di Acacia dealbata, Gazz. Chim. Ital. 85, 703–713, 1043–1049 (1955); 86, 965–979 (1956).
E. Imperato, Chalconaringenin 2’-xyloside: a new anthochlor pigment from Acacia dealbata, Chemistry and Industry 1980, 786–787; A new chalcone glucoside and cernuoside from the flowers of Acacia dealbata, Experientia 38, 67–68 (1982); A chalcone glycoside from Acacia dealbata, PHYCHEM 21, 880–881 (1982).
E. P. Benimeli, Rutin and guercetin from plants of Chile, An. Fac. Quim. Farm., Univ. Chile 16, 133–142 (1964). Ex CA 64, 13084 (1966). Vermutlich aus Blattmaterial.
D. B. Lindenmayer et al., The sugar and nitrogen content of the gums of Acacia species in the Mountain Ash and Alpine Ash forests of central Victoria and its potential implications for exudivorous (= Exudat-konsumierende) arboreal marsupials, Austral. J. Ecol. 19, 169–177 (1994).
D. M. W. Anderson and I. C. M. Dea, Composition of the gum from Acacia drepanolobium Harms, ex Sjörsted; Some structural features of Acacia drepanolobium gum, Carbohydrate Res. 5, 461–469 (1967); 7, 109120 (1968).
D. G. Steyn and C. Rimington, The occurrence of cyanogenic glucosides in South African species of Acacia, Onderstepoort J. Veterinary Sci. Animal Industry 4, Number 1, 51–63 (1935).
D. W. Gammon et al., Theglycoproteins of Acacia erioloba exudates, Carbohydrate Res. 158, 157–171 (1986).
J. W. Clark-Lewis and P. I. Mortimer, Melacacidin and isomelacacidin from Acacia species, Jcs 1960, 4106–4111. Genaue Beschreibung der Eigenschaften der zwei epimeren Melacacidine (7,8,3’,4’-Tetrahydroxyflavan-3,4-diole).
E. Demole et al., Sur les constituants odorants de l’essence absolue de Cassie (Acacia farnesiana Willd.), Helv. Chim. Acta 52, 24–32 (1969): U. a. Methylsalicylat, Benzylalkohol, Dihydroactinidiolid und als wichtige Geruchskomponenten drei neue CH-Verbindungen: cis-3-Methyldec-3-en-ol, cis-3-Methyldec-3-en-säure, trans-3-Methyldec-4-en-säure.
A. EL-Hamidi and I. Sidrak, The investigation of Acacia farnesiana essential oil, PM 18, 98–100 (1970). Nachweis von Geraniol, Geranylacetat, Linalylacetat, Cuminalkohol und a-Ionon.
M. Ilyas et al., J. Indian Chem. Soc. 47, 183–184 (1970).
J. A. Dominguez and H. E Martinez, Ciencia (Mexico) 25, 107–108 (1967). Ex CA 67, 18532 (1967).
H. I. EL Sissi et al., PHYCHEM 12, 2303 (1973).
H. I. EL Sissi et al., ibid. 13, 2843–2844 (1974).
S. Zaka et al., Composition of total lipids from Acacia arabica and A. farnesiana seed oils, Pakistan J. Sci. Industr. Res. 29, 427–429 (1986).
FanieVanHeerden et al., Metabolites from purple heartwoods of Mimosoideae. Part 4. Acacia fasciculifera F. Muell. ex Benth.: Fasciculiferin, fasciculiferol and the synthesis of 7-aryl-and 7 flavanyl peltogynoids, Jcs Perkin I 1981, 2483–2490; auch Tetrahedron Letters 1979, 4507–4510. Peltogynoide PA-Dimere waren im Holz nicht nachweisbar.
R. Paris, Sur un nouveau flavonoside des fleurs de l’Acacia floribunda Willd., CR 231, 72–73 (1950).
R. Paris, CR 238, 2112–2114 (1954). Floribundosid mit Salipurposid (= Naringenin-5-glc) identifiziert.
E. Malan and A. Sireeparsad, The structure and synthesis of the first dimeric proteracacinidins, PHYCHEM 38, 237–239 (1995).
P. B. Oelrichs and T. Mcewan, Isolation of the toxic principle in Acacia georginae, Nature 190, 808–809 (1961). Aus Samen isoliert.
A. T. Bell et al., Acacia georginae poisoning of cattle and sheep, Austral. Veterinary J., October 1955, 249–257.
J. E. Barnes, Georgina poisoning of cattle in the Northern Territory, ibid., September 1985, 281–290.
D. B. Harper and D. O’Hagan, The fluorinated natural products, Reports 11, 123–133 (1994). Mit 141 Ref.
R. J. Mead and W. Segal, Formation of ß-cyanoalanine and pyruvate by Acacia georginae, PHYCHEM 12, 1977–1981 (1973).
E. Malan and D. H. Pienaar, PHYCHEM 26, 2049–2051 (1987).
E. Malan, ibid. 29, 1334–1335 (1990).
G. J. Leach and T. Whiffin, Analysis of a hybrid swarm between Acacia brachybotrya Benth. and A. calamifolia Sweet ex Lindl., Bot. J. Linn. Soc. 76, 53–69 (1978).
C. Rimington, The occurrence of cyanogeneticglucosides in South African species of Acacia. II. Determination of the chemical constitution of acacipetalin. Isolation from A. stolonifera Burch., Onderstepoort J. Veterinary Sci. Animal Industry 5, Number 2, 445–464 (1935).
Shirley C. Churms et al., Analytical comparison of gums from Acacia hebeclada and other Gummiferae species, PHYCHEM 25, 2807–2809 (1986).
D. M. W. Anderson and J. G. K. Farquhar, The composition of eight Acacia gum exudates from the series Gummiferae and Vulgares, PHYCHEM 18, 609–610 (1979). GUMMIFERAE: A. hebeclada, kirkii, nebrownii und reficiens; VULGARES: A. erubescnes, fleckii, mellifera und mellifera subsp. detinens.
M. O. Farooq et al., Les saponines et les sapogénines de l’Acacia intsia Willd., Ann. Pharm. Franç. 17, 442–446 (1959).
M. O. Farooq et al., Über das aus Acacia intsia Willd. isolierte Säure-Sapogenin (Acacininsäure), Arch. Pharm. 294, 133–137 (1961).
Eid., Isolierung eines neuen Triterpenalkohols, Acaciol, aus Acacia intsia Wild., ibid. 294, 197–200 (1961). C30Hsoo F 160— 161 °.
J. W. Clark-Lewis and I. Dainis, A new glycoside and other extractives from Acacia ixiophylla: Rhamnitrin (rhamnetin-3u-L-rhamnoside), Austral. J. Chem. 21, 425–437 (1968).
K. C. Joshi et al., Two novel cassane diterpenoids from Acaciajacquemontii, Tetrahedron 35, 1449–1453 (1979).
A. J. Carlson et al., Acacia karroo gum, Jcs 1955, 1428–1431; vgl. auch A. M. Stephen and D. C. Vogt, Tetrahedron 23, 1473–1478 (1967). Strukturanalyse.
D. M. W. Anderson and R. N. Smith, The composition of the gum from Acacia laeta var. hashab, Carbohydrate Res. 4, 55–62 (1967).
D. M. W. Anderson et al., Some structural features of Acacia laeta gum, ibid. 7, 320–333 (1968). Gleichzeitig strukturchemische Untersuchungen; Identifikation von fünf neutralen Biosen aus Teilhydrolysaten.
B. Voirin et al., JNP 49, 943 (1986).
M. C. Sharma and R. K. Singh, Herba Polon. 33, 83–85 (1987).
R. K. Bansal et al., Diterpenoids from Acacia leucophloea, PHYCHEM 19, 1979–1983 (1980). Wurzeln in Umgebung von Jaipur geerntet.
A. Perales et al., Tetrahedron Letters 21, 2843–2844 (1980).
M. Saxena and S. K. Srivastava, Anthraquinones from roots of Acacia leucophloea, JNP 49, 205–209 (1986).
M. Mishra and S. K. Srivastava, Indian J. Pharm. Sci. 47, 154–155 (1985). Ex CA 105, 75930 (1986).
K. Vijayakumari et al., Nutritional assessment and chemical composition of the lesser known tree legume Acacia leucophloea (Roxb.) Willd., Food Chemistry 50, 285–288 (1994).
D. Ferreira et al., Biflavanoid proguibourtinidin carboxylic acids and their biflavanoid homologues from Acacia luederitzii, PHYCHEM 24, 2415–2422 (1985). Extrahiert wurde peripheres Kernholz der var. luederitzii nach Entwachsung mit Hexan. Erste carboxylgruppenhaltige dimere PA. Bereits früher hatte die gleiche Arbeitsgruppe (I. C. Du Preez et al., Jcs Chem. Commun. 1970, 492–493) ein carboxylgruppenhaltiges dimeres Proguibourtinidin aus Holz von A. luederitzii var. retinens (Sim) J. Ross et Brenan beschrieben.
Maritza C. Martinez et al., Composition of Acacia macracantha gum exudates, PHYCHEM 31, 535–536 (1992).
J. S. Fitzgerald and A. A. Sioumis, Austral. J. Chem. 18, 433–434 (1965).
L. Lutz, L’ Acacia decurrens Willd. var. mollissima Willd. producteur de la Gomme Wattle, J. Pharm. Chim. [9] 2, 49–53 (1942). Beschreibung von einigen Eigenschaften von aus Madagaskar stammendem Holz, Rinde und des Gummi-Exudats sowie von Versuchen zur Gummiproduktion auf Holz-und Rindenstücken durch Infektion mit holzzerstörenden Pilzen.
S. Ohara et al., Condensed tannins from Acacia mearnsii and their biological activities, Mokuzai Gakkaishi 40, 1363–1374 (1994). Seit etwa 40 Jahren Versuchsanbau in Japan in den Provinzen Fukuoka, Kumamoto and Kagoshima auf der Südinsel Kyushu. Untersucht frische Stammscheiben von 4–5jährigen Bäumen aus einem auf der Insel Amakusa (Kumamoto) gepflanzten Wäldchen.
A. M. Mackenzie, The flavonoids of the leaves of Acacia mearnsii, PHYCHEM 8, 1813–1815 (1969).
A. M. Mackenzie, Mearnsitrin: A newflavonoidglycosidefrom leaves of Acacia mearnsii, Tetrahedron Letters 1967, 2519–2520.
E C. J. Zeijlemaker and A. M. Mackenzie, A note on the occurrence and inheritance of a new flavonoid constituent of Black Wattle, The Wattle Research Institute Report for 1965–1966, 57–58.
F. C. J. Zeijlemaker, Distribution of mearnsitrin in Acacia populations, PHYCHEM 8, 435–436 (1969).
M. Stephen, Acacia mollissima Wild. II. Extractives from wood, J. Sci. Food Agric. 3, 37–43 (1952).
H. H. Keppler, Isolation and constitution of mollisacacidin, a new leucoanthocyanidin from the heartwood of Acacia mollissima Wild., Jcs 1957, 2721–2724.
D. G. Roux and E. Paulus, Biochemical and stereochemical interrelationships of (+) Tustin from Black-Wattle heartwood (Acacia mollissima), Biochem. J. 77, 315–320 (1960).
D. G. Roux and E. Paulus, Isolation of (-)-3’,4,7-trihydroxyflavan-3-ol [(-) fisetinidol], a naturally occurring catechin from Black-Wattle heartwood, Biochem. J. 78, 120–123 (1961).
D. G. Roux and E. Paulus, Polymeric leuco-fisetinidin tannins from the heartwood of Acacia mearnsii, Biochem. J. 82, 320–324 (1962).
S. E. Drewes and D. G. Roux, Optically active diastereoisomers of (+)-mollisacacidin by epimerkation, Biochem. J. 94, 482–487 (1965).
S. E. Drewes et al., Stereo-chemistry of a natural bileucofisetinidin, Jcs Chem. Commun. 1966, 368–369; Three diastereoisomeric 4,6-linked bileucofisetinidin from the heartwood of Acacia mearnsii, Jcs 1967C, 1217–1227.
S. E. Drewes and A. H. Ilsley, Isolation of 3-methoxyfisetin from Acacia mearnsii, Jcs Chem. Commun. 1968, 1246–1247. Gemeint ist Fisetin-3-methylether, C16H1206.
S. E. Drewes and D. G. Roux, Mass spectrometry of derivatives of natural trileucofisetinidins, Jcs Chem. Commun. 1968, 1–4.
S. E. Drewes and A. H. Ilsley, Isomeric leucofisetinidins from Acacia mearnsii, PHYCHEM 8, 1039–1042 (1969).
S. E. Drewes and A. H. Ilsley, Dioxan-linked biflavanoid from heartwood of Acacia mearnsii, Jcs 1969C, 897–900.
E. V. Brandt et al., Cycloformation of two tetraflavanoid profisetinidin condensed tannins, Jcs Chem. Commun. 1986, 913–914.
A. M. Stephen, The chemical constitution of Wattle (Mimosa) tannin, Jcs 1949, 3082–3085.
D. G. Roux and E. A. Maihs, Isolation and estimation of (—)-7,3’,4’,5’-tetrahydroxyflavan-3-ol, (+)-catechin and (+) gallocatechin from Black-Wattle bark extract, J. Biol. Chem. 74, 44–49 (1960).
S. E. Drewes et al., The stereochemistry ofbiflavanols from Black Wattle bark, Jcs Chem. Commun. 1966, 370–371; Some stereochemically identical biflavanols from bark tannins of Acacia mearnsii, Jcs 1967C, 1302–1308.
J. J. Botha et al., Direct synthesis, structure and absolute configuration of four biflavanoids from Black Wattle bark („Mimosa“), Jcs Chem. Commun. 1978, 700–702.
AnnemariaCronjÉ et al., Novel prorobinetinidins, and the first A-type proanthocyanidin with a 5-desoxy A- and a 3,4-cis C-ring from the maiden investigation of commercial Wattle bark extract, Jcs Perkin I 1993, 2467–2477.
E C. J. Zeijlemaker, An exploratory study of the bioynthetic relationships of the flavonoids of Acacia mearnsii, The Wattle Research Institute Report for 1965–1966, 52–56.
L. J. Porter, Flavans and proanthocyanidin in J. B. Harborne (Ed.) 1994, 1. c. S. 24.
H. M. Saayman and D. G. Roux, The origin of tannins and flavonoids in Black-Wattle bark and heartwoods, and their associated „non-tannin“ components, Biochem. J. 97, 794–801 (1965).
A. M. Stephen, Acacia mollissima. Part I. The component sugars and aldobiouronic acid of Black Wattle gum, Jcs 1951, 646–649.
G. O. Aspinall et al., Acacia mearnsii gum, Carbohydrate Res. 7, 421–430 (1968).
E. T. King and W. Bottomley, The occurrence of a flavan-3: 4-diol (melacacidin) in Acacia melanoxylon, Jcs 1954, 1399–1403; vgl. auch Chemistry and Industry 1953, 1368. Melacacidin nur als amorphes Pulver isoliert; erste Isolation eines Flavan-3,4-diols; Keppler (vgl. Ref. [228] erhielt zum ersten Mal ein kristallisiertes Flavan-3,4-diol.
W. Bottomley, The conversion of melacacidin into 3:3’:4’:7: 8-pentahydroxyflavylium chloride, Chemistry and Industry 1954, 516–517.
L. Y. Foo and H. Wong, Diastereoisomeric leucoanthocyanidins from the heartwood of Acacia melanoxylon, PHYCHEM 25, 1961–1964 (1986).
L. Y. Foo, Configuration and conformation of dihydroflavonols from Acacia melanoxylon, PHYCHEM 26, 813–817 (1987). Auch Besprechung Biogenese von Flavan-3-olen und -3,4-diolen; vgl. auch id., Jcs Chem. Commun. 1986, 675–677.
L. Y. Foo, A novel pyrogallol A-ring proanthocyanidin dimer from Acacia melanoxylon, Jcs Chem. Commun. 1986, 236–237.
L. Y. Foo, Isolation of I–4–0–4Jlinked biflavanoids from Acacia melanoxylon: First examples of a new class of single ether–linked proanthocyanidin dimers, Jcs Chem. Commun. 1989, 1505–1506.
M. R. Falco and J. X. DE Vries, Naturwissenschaften 51, 462–463 (1964). Blüten von in Uruguay kultivierten Bäumen geerntet.
X. C. Souto et al., Comparative analysis of allelopathic effect produced by four forestry species during decomposition process in their soils in Galicia (NW Spain), J. Chem. Ecol. 20, 3005–3015 (1994).
J. J. M. Meyer and M. Grobbelaar, Biosynthesis of pipecolic and 4-hydroxypìpecolic acid, PHYCHEM 25, 1469–1470 (1986).
K. C. Joshi et al., PM 27, 281–283 (1975).
R. A. Fade et al., Triterpene glycosides of Acacia myrtifolia, Austral. J. Chem. 26, 839–844 (1973).
E. Wollenweber and D. S. Seigler, Flavonoids from the exudate of Acacia neovernicosa, PHYCHEM 21, 1063–1066 (1982).
E. Wollenweber, Chemistry and distribution of flavonoids in leaf resins of desert plants, 3rd Intern. Conf. Chem. Biotechn. Biol. Active Nat. Prod., Bulg. Acad. Sci., Sofia, Vol. 3, 99–112 (1985).
T. G. Fourie et al., 3’,4’,7,8-Tetrahydroxyflavonoids from the heartwood of Acacia nigrescens and their conversion products, PHYCHEM 11, 1763–1770 (1972).
E. Malan, PHYCHEM 33, 733–734 (1993).
S. I. Ali and M. Qaiser, Hybridisation in A. nilotica (Mimosoideae) complex, Bot. J. Linn. Soc. 80, 69–77 (1980).
E Martin and J. Vassal, Distribution maps of Acacia in Chad, Bull. Igsm 17, 132–155 (1989). S. 151 A. nilotica subsp. adstringens, nilotica und tomentosa; Unterarten nicht getrennt angegeben,...,,as their distribution is not yet fully known“.
E. Malan, Derivatives of (+)-catechin-Sgallates from the bark of Acacia nilotica, PHYCHEM 30, 2737–2739 (1991). Rinde bei Durban gesammelt.
D. M. W. Anderson and K. A. Karamalla, Inter-nodule variation of the acidic components in Acacia nilotica gum, Carbohydrate Res. 2, 403–410 (1966). Tatsächlich Gummikörner von 10 verschiedenen Bäumen analysiert, genauer also interindividuelle Variation.
D. M. W. Anderson et al., Some structural features of Acacia arabica gum, Jcs 1967C, 1476–1486.
H. Endres und M. Hilal, Isolierung verschiedener Polyhydroxyphenole aus den Fruchtschoten von Acacia arabica IVilld. var. indica Beath., PHYCHEM 2, 151–156 (1963). Material in Oberägypten geerntet; isoliert Gallussäure, m-Digallussäure, Chlorogensäure; identifiziert Robidandiol (= Leucorobinetinidin).
H. I. EL Sissi et al., Über die Gerbstoffe der Rinde der Acacia nilotica, Das Leder 18, 32–35 (1967). Viele Polyphenole nachgewiesen; Protocatechu-und Gallussäure und (+)-Catechin isoliert.
S. M. EL-Sayyal, Tannins of Acacia nilotica pods, Fitoterapia 50, 115–117 (1979). Isoliert Gallussäure, Methylgallat, m-Digallussäure, dimere PA mit (—)-Epicatechin als Baustein und PA-Oligomere, welche mit Säure Fisetinidin liefern.
S. M. H. AYoua, Molluscicidal properties of Acacia nilotica subspecies tomentosa and adstringens. I, II, Fitoterapia 54, 183–187, 189–192 (1983); Polyphenolic molluscicides from Acacia nilotica, PM 50, 532 (1984). Wirkstoffe sind die Gerbstoffe.
O. M. Abd EL Nabi et al., Antimicrobial activity of Acacia nilotica var. nilotica, J. Ethnopharmacol. 37, 77–79 (1992). Material in Central-Sudan geerntet.
E. A. Mostafa et al., Isolation and constitution of certain flavonoid constituents of Acacia arabica L. flowers, J. African Med. Plants 3, 47–55 (1980).
G. P. Sastry et al., Indian J. Chem. 1, 542–543 (1963).
K. U. Bhanu et al., Studies on the tannins of Babul, Acacia arabica, bark, Austral. J. Chem. 17, 803–809 (1964).
S. K. Bagchi and J. Singh, Provenance variation in Acacia nilotica: Free proline content in leaves, Indian Forester 120, 529–532 (1994). 35 Samenherkünfte gesät; nach 15 Monaten Blätter von je vier Jungpflanzen pro Herkunft analysiert. Große, mutmaßlich genetisch bedingte Variation der Gehalte an freiem Prolin beobachtet.
D. M. W. Anderson and G. M. Cree, Carbohydrate Res. 6, 385–403 (1968). Ex CA 69, 19447 (1968).
J. W. Clark-Lewis et al., Teracacidin, a new leucoanthocyanidin from Acacia intertexta, Jcs 1961, 499–503. Bezüglich botanische Identität des untersuchten Materials vgl. [52] und [306].
E. V. Brandt and D. G. Roux, Metabolites from purple heartwood of Mimosoideae. I. Acacia pence F. Muell.: The first natural 2,3-cis-peltogynoids, Jcs Perkin I 1979, 777–780.
B. Rovelli and G. N. Vaughan, Austral. J. Chem. 20, 1299–1300 (1967).
G. V. N. Rayudu and S. Rajadurai, Occurrence of d-catechin in Acacia planifrons, Leather Sci. (Madras, India) 12, 162–163 (1965). Ex CA 63, 924 (1965).
R. Alexander et al., Austral. J. Chem. 31, 2741–2744 (1978).
E B. Whitfield et al., Volatile components from the roots of Acacia pulchella R. Br. and their effect on Phytophthora cinnamomi Rands, Austral. J. Bot. 29, 195–208 (1981).
E. L. Hirst and A. S. Perlin, The gum of Acacia pycnantha, Jcs 1954, 2622–2627.
G. O. Aspinall et al., The structure of Acacia pycnantha gum, Jcs 1959, 1697–1706.
J. W. H. Adam et al., Structural relationships of whole Acacia pycnantha gum and a component of low molecular weight, Carbohydrate Res. 54, 304–307 (1977). Im Prinzip gleich gebaut.
A. M. D. EL-Mousallamy et al., Polyphenols of Acacia raddiana Savi, PHYCHEM 30, 3767–3768 (1991).
F. T. Lorente et al., PHYCHEM 21, 1461–1462 (1982).
H. I. EL Sissi and A. E. A. EL Sherbeini, The tannins of Acacia saligna, Das Leder 12, 150 (1961). Ex CA 55, 20472 (1961).
Eid., The flavonoid components of the leaves of Acacia saligna, Qual. Plant. Mat. Veget. 14, 257–266 (1967).
A. A. Degen et al., Acacia saligna as a fodder tree and the interaction of its tannins with fibre fractions, J. Sci. Food Agric. 68, 65–71 (1995).
T. G. Fourie et al., 8–0-Methyl-and the first 3-O-methylflavan-3,4-diols from Acacia saxatilis E. Moore, PHYCHEM 13, 2573–2581 (1974).
E. Bourquelot, Sur l’origine de la coloration de certaines gommes, J. Pharm. Chim. [6] 5, 164–167 (1897).
L. Rosenthaler, Über die Abtötung der oxydierenden Enzyme des Gummi arabicum, Pharm. Ztg. 74, 317 (1929).
A. Baerheim Svendsen og E. Drottning, Inaktivering av peroksydaser i Mucilago Gummi Arabici (dänisch mit deutscher Zusammenfassung), Dansk Tidsskr. Farm. 27, 129–135 (1953).
J. P. Joseleau and G. Ullmann, Biochemical evidence for the site of formation of gum arabic in Acacia senegal, PHYCHEM 29, 3401–3405 (1990).
D. M. W. Anderson et al., An analytical study of different forms of the gum from Acacia senegal Willd., Carbohydrate Res. 6, 97–130 (1968).
D. M. W. Anderson et al., Gum arabic (Acacia senegal) from Niger. Comparison with other sources and potential agroforestry development, Biochse 19, 447–452 (1991).
P. Jurasek et al., The classification of natural gums, VI. Gum arabic derived from Acacia senegal var. kerensis from Kenya, Food Hydrocolloids 8, 567–588 (1994).
D. M. W. Anderson and Weiping Wang, Acacia gum exudates from Somalia and Tanzania: The Acacia senegal complex, Biochse 18, 413–418 (1990).
J. Defaye and E. Wong, Structural studies of gum arabic, the exudate polysaccharide from Acacia senegal, Carbohydrate Res. 150, 221–231 (1986). Hauptsächlich (1 → 3)-ß-Galaktanzentrum mit (1 → 6)-Galaktopyranosyl-Verzweigungen; OH-3 und OH-6 der Seitenkettengalaktosyle tragen Biosemoleküle: Ara-(1→3)-Ara-(→ und Rha(1 — 4)-GIcU-(1 →6).
D. M. W. Anderson and E J. McdouGall, The amino acid composition and quantitative sugar-amino acid relationship in sequential Smith-degradation products from gum arabic (Acacia senegal [L.] Willd.), Food Additives and Contaminants 4, 125–132 (1987). Molares Polysaccharid-Protein-Verhältnis im Gummi = 31:1; Hydroxyprolin, Serin, Prolin und Threonin sind Hauptaminosäuren des Gummi-Proteins, resp. 41, 9,2, 7,5 and 7,5% des Aminosäuretotals.
M. E. Osman et al., Characterization of gum arabic fractions obtained by ion-exchange chromatography, PHYCHEM 38, 409–417 (1995). Zwei Gummimuster untersucht; sie ließen sich in 5 (Muster A) oder 6 (Muster B) Fraktionen aufteilen; alle Fraktionen hatten ähnliche Kohlenhydratzusammensetzung: Gal 32–42%, Ara 22–27%, Rha 12–16%, G1cU 9–20%; variabler waren die Proteingehalte der Fraktionen I— VI, 0,31–2,8%, und die Zusammensetzung der Proteine in den einzelnen Fraktionen; alle isolierten Fraktionen waren polydispers. Untersucht zwei Gummimuster aus dem Sudan (Prov. Kordofan).
K. C. Joshi et al., Indian J. Chem. 13, 638–639 (1975).
D. M. W. Anderson and M. A. Herbich, The variation in composition and properties of gum nodules from Acacia,seyal Del., Jcs 1963, 1–6.
D. M. W. Anderson and G. M. Cree, The aldobiouronic ae’ids in gums from Acacia species, Carbohydrate Res. 6, 214–219 (1968).
M. G. Ettlinger et al., Proacacipetalin and acacipetalin, Jcs Chem. Commun. 1977, 952–953. Da Rimingtoí’ zur Neutralisation organischer Säuren bei der Isolation von Acacipetalin CaCO3 zufügte, trat Isomerisation des genuin vorhandenen Proacacipetalins auf (Verschiebung der Doppelbindung); darum wurde gut kristallisierendes Acacipetalin isoliert. Vermeidet man bei der Isolation Alkali, dann erhält man das genuin vorliegende Proacacipetalin. In alkalischem Milieu entsteht aus diesem ebenfalls leicht Epiproacacipetalin, so daß man je nach Umständen reine Verbindungen oder Mischungen von drei isomeren Verbindungen, i.e. Proacacipetalin und sein Diastereoisomer, das Epiproacacipetalin, und deren Doppelbindungsisomer, das Acacipetalin, erhält.
CH. Poupat et al., PHYCHEM 15, 2019–2020 (1976).
J. W. Clark-Lewis and I. Danais, Austral. J. Chem. 17, 1170–1173 (1964). Hier zum ersten Male berichtet, daß Erstisolation von Teracacidin nicht mit Holz von A. intertexta. (darauf Name Teracacidin basiert), sondern mit solchem der durch Pedley in 1964 beschriebenen A. orites ausgeführt worden war; Beibehaltung des Namens Teracacidin.
CH. Poupat et T. Sévenet, PHYCHEM 14, 1881–1882 (1975).
J. J. Brophy et al., PHYCHEM 26, 3071–3072 (1987). Total 44 Komponenten identifiziert.
H. S. Saharia and R. D. Tiwari, Current Sci. 45, 294–295 (1976).
P. Gandhi, PHYCHEM 15, 1097 (1976). In Phytochemical Reports.
P. Gandhi, Experientia 33, 1272 (1977).
Wendy K. Swenson et al., Cyanogenesis in Acacia sutherlandii, PHYCHEM 26, 1835–1836 (1987). N. B. Bezüglich Sutherlandin-Ausbeute sind die in Ref. [43] auf S. 307 von Bd. XI a gemachten Angaben zu korrigieren; für die Isolation dieses neuen Körpers wurde 174 g getrocknetes Material verwendet; es lieferte 16 mg Sutherlandin als weißes Pulver; auch die Sutherlandin-Formel (IX auf S. 304) ist stereochemisch unrichtig dargestellt; Sutherlandin hat (Z)-Stereochemie an der Doppelbindung, i.e. CN- und Glc-O-CHZ Gruppen auf gleicher Seite.
H. Pourmohseni et al., Cyanoglucosides in the epidermis of Hordeum vulgare, PHYCHEM 33, 295–297 (1993).
D. M. W. Anderson and P. C. Bell, The composition and properties of gum exudates from subspecies of Acacia tortilis, PHYCHEM 13, 1875–1877 (1974).
D. W. Gammon et al., Arabinogalactan-protein components of Acacia tortilis gum, Carbohydrate Res. 151, 135–146 (1986). Der heteracantba-Schleim gleicht in mancher Hinsicht dem durch die gleiche Arbeitsgruppe früher untersuchten Schleim des verwandten Taxons A. robusta Burchell: S. C. Chrums and A. M. Stephen, Carbohydrate Res. 133, 105–123 (1984).
L. Prakash and M. Singh, Triterpenoids and other constituents of Acacia tortilis, J. Indian Chem. Soc. 63, 853–854 (1986).
M. Hagos et al., Isolation of smooth muscle relaxing 1,3-diarylpropan-2-ol derivatives from Acacia tortilis, PM 53, 27–31 (1987).
A. Kljloa et al., 1,3-Diarylpropanes and Propan-2-ols from Virola species, PHYCHEM 20, 1385–1388 (1981).
M. Hagos and G. Samuelsson, Quantitative determination of quracol A, B and (+) fisetinidol in bark and gum of Acacia tortilis, Acta Pharm. Suec. 25, 321–324 (1988)
M. Hagos, Phytochemical and pharmacological investigations of Acacia tortilis, a Somalian medicinal plant used to treat asthma, Acta Pharm. Nord. 1, 63 (1990). In Somalia wird das Asthmaheilmittel aus gummibedeckter Rinde bereitet; die beschriebenen Untersuchungen bestätigen die empirisch erworbene Kenntnis, daß gummifreie Rinde viel weniger wirksam ist.
GladysLeon DE Pinto et al., Comparison of gum specimens from Acacia tortuosa and other Gummiferae species, Biochse 21, 795–797 (1993). Ersatz von Rha durch Xyl, hoher Eiweißgehalt und negative Drehung fallen für einen Vertreter der Gummiferae auf.
P. Jurasex et al., A chemometric study of the Acacia (gum arabic) and related natural gums, Food Hydrocolloids 7, 73–85 (1993). Ziemlich viele Druckfehler bei Pflanzennamen in Tabellen.
I. P. Varshney and K. M. Shamsuddin, Absolute structure of acacic acid, Bull. Chem. Soc. Japan 43, 3830–3840 (1970).
G.-J. Krauss und H. Reinbothe, Die Aminosäuren der Gattung Albizia Durazz., Biochem. Physiol. Pflanzen 161, 243–265 (1970).
H. Reinbothe, Zur Biosynthese von Albizziin in Albizzia lophantha Benth., Flora 152, 545–554 (1962). Versuche mit fruktifizierenden Pflanzen und mit Keimlingen; Fütterung markierter Verbindungen; noch keine definitiven Ergebnisse. Annahme von biogenetischer Verwandtschaft zwischen ß-Aminoalanin, Albizziin und Willardiin.
R. Gmelin et al., Über das Vorkommen von Djenkolsäure und einer C-S-Lyase in den Samen von Albizzia lophantha Benth., Z. Naturforsch. 12b, 687–697 (1957). In ganzen Samen 1,1% und in Samenkernen 2,1% Djenkolsäure bestimmt; 1,6% aus Samenkernen isoliert; aus Samenkernen C-S-Lyase-Präparate hergestellt und Wirkungsweise des Enzyms untersucht; Hypothese über Wirkungsweise der Albizia—C-S-Lyase (vgl. Abb. 40).
R. Gmelin et al., Isolierung von 2 neuen pflanzlichen Aminosdaren: S(ß-Carboxyäthy1)-L-cystein und Albizziin aus Samen von Albizzia julibrissin Durazz., Z. Naturforsch. 13b, 252–256 (1958). Samen waren frei von C-S-Lyasen; Isolation von Albizziin aus Samen von A. julibrissin (etwa 1% Ausbeute reine Verbindung, F 214–215°) und von A. lophantha (Ausbeute etwa 0,9% reine Verbindung); aus Samen von A. julibrissin gleichzeitig etwa 0,28% reines (F 218°) S(ß-Carboxyethyl)-L-cystein erhalten. Nach Spaltung der letzterwähnten Aminosäure mit Albizia—C-S-Lyase konnten ß-Mercaptopropionsäure, Brenztraubensäure und Ammoniak nachgewiesen werden.
E. G. Bollard, Translocation of organic nitrogen in the xylem, Austral. J. Biol. Sci. 10, 292–301 (1957).
TheWealth OF India, 2nd Ed., Vol. I: A (1985), S. 124. Übersicht über Saponine und Sapogenine in Material von Indien.
L. Comeau, Sur la structure d’un hétéroside commun à quelques Mimosacées de l’Ouest Africain, Thèse Fac. Sci. d’Abidjan, No. d’ordre 16 (1972), Référence Cnrs A.O. No. 6305; vgl. auch L. C. Comeau et J. A. Braun, Bull. Soc. Chim. France 1974, 716–720. Betonung der leichten Lactonisierung der Dihydroxyoleanolsäure.
Arbeitsgruppe Hiller, Sammelberichte über Triterpensaponine I bis IV, Pharmazie 21, 733–736 (1966); 25, 219–221 (1970); 32, 373–376 (1977); Leguminosae unterteilt in Mimosaceae, Caesalpiniaceae und Papilionaceae; 37, 624–625 (1982): Hier Leguminosae ohne Unterteilung; in zwei späteren Berichten (1987, 1990) ist die Gattung Albizia nicht mehr vertreten.
L. Nogueira Prista et al., Estudo quimico da rain de Albizzia adianthifolia (Schumacher) IV F. Wight, Garcia de Orta 10, 93–102 (1962).
G. Mazzanti et al., Occurrence of histamine and related imidazole compounds in extracts from root and trunk barks of Albizzia adianthifolia, anthelmintica and julibrissin, Fitoterapia 54, 275–279 (1983). Möglicherweise handelt es sich bei weiteren in Rinden von A. adianth folia nachgewiesenen Histidinderivaten (N-Acetylhistamin, Imidazolessigsäure, zwei nicht identifizierte Pauli-Reagenz-positive Komponenten) nicht um genuine Naturstoffe.
H. A. Candy et al., PHYCHEM 17, 1681–1682 (1978). Die Autoren sprechen von Tetrahydroxy-flavon und -flavanon, statt von Pentahydroxy-flavon und -flavanon oder aber von Tetrahydroxyflavonol und -flavanonol.
V. H. Deshpande and R. K. Shastri, Phenolics from Albizzia lebbek, amara and procera, Indian J. Chem. 15B, 201–204 (1977).
C. V. Reddy Sastry et al., Chemistry of saponins. III. Isolation of a new flavonol glycoside, 4’-O-methylquercetin-3-rutinoside, from Albizzia amara Bentb., Indian J. Chem. 5, 613–615 (1967).
I. P. Varshney and K. M. Shamsuddin, Saponins and sapogenins: Part XVI —Echinocystic acid from seeds of Albizzia amara Benth., J. Sci. Ind. Res. (India) 21B, 341 (1962).
I. Chandra et al., Chemical investigation of the oil from seeds of Albizzia amara, J. Sci. Ind. Res. (India) 15B, 196–198 (1956).
WoonghchonMar et al., Biological activity of novel macro cyclic alkaloids (budmunchiamines)from Albizia amara detected on the basis of interaction with DNA, JNP 54, 1531–1542 (1991); J. M. Pezzuto et al., Budmunchiamines D-I from Albizia amara, PHYCHEM 31, 1795–1800 (1992).
W. Spaich und S. GRÜNer, Albizzia anthelmintica, Pharmazie 9, 1003–1005 (1954). Mit vielen Angaben über Erfahrungen bei der Verwendung der Rinde (Cortex Musennae) als Wurmmittel; Wirkstoffe sind Saponine; schöne Abb. eines blühenden Zweiges.
R. Tschesche und D. Forstmann, Musennin, ein wurmwirksames Saponin aus der Rinde von Albizzia anthelmintica, Chem. Ber. 90, 2383–2394 (1957); R. Tschesche et al., Über die Saponine von Albizzia anthelmintica Brongn., Z. Naturforsch. 21b, 596–597 (1966); R. Tschesche und E.-J. KÄMmerer, Die Struktur von Musennin und Deglucomusennin, Justus Liebigs Ann. Chem. 724, 183–193 (1969). 1966 und 1969 mitgeteilt, daß Wurzelrinde extrahiert wurde.
G. Carpani et al., Saponins from Albiizia anthelmintica, PHYCHEM 28, 863–866 (1989).
M. S. M. Rawa et al., Spermicidal activity and chemical investigation of Albizzia chinensis, Fitoterapia 60, 168–169 (1989). Keine Ausbeuten angegeben; Rinde im Universitäts-Campus Srinagar, Indien, geerntet.
D. M. W. Anderson et al., 1. c. Bd. XI a, 199 und 210–211; F. G. Torto, West African J. Biol. Chem. 5, 27 (1961): Ex CA 56, 7712 (1961).
A. Lipton, Physiological activity in extracts of Albkia species, Nature 184, 822–823 (1959); An active glycoside from Albiiia species and its action on isolated uterus and ileum, J. Pharm. Pharmacol. 15, 816–824 (1963); Effects on anaesthetised animals of an oxytocic glycoside extracted from certain Albizia species, ibid. 16, 369–374 (1964).
WonSick Woo and SamSikKang, Isolation of a new monoterpene conjugated triterpenoid from the stem bark of Albiizia julibrissin Durazz., JNP 47, 547–549 (1984). Und hier zitierte koreanische Literatur.
J. Kinjo et al., The first isolation of lignan tri-and tetraglycosides, Chphbul 39, 1623–1625 (1991).
Id., A biodegradation pathway ofsyringaresinol, ibid. 39, 2952–2955 (1991). Auch Abbauprodukte von Syringaresinol-Derivaten isoliert, u. a. 4Apiosylglucosid von Syringasäuremethylester.
H. HigucHI et al., Four new glycosides from Albiiziae Cortex, Chphbul 40, 534–535 (1992). Zwei (+)-Lyoresinoldiglucoside, ein Vomifoliolglykosid und Apiosyl-(1 —0 2)-Glucosid von 3,4,5-Trimethoxyphenol.
H. Higuchi et al., An arrhythmic-inducingglycoside from Albizzia julibrissin Durazz., Chphbul 40, 829–831 (1992). Drei glykosidische Pyridoxinderivate isoliert, von welchen Julibrin-II stark inotrope Wirkung hat (verursacht Herzarrhythmien); für das Neurotoxin vgl. [59,60] und [75].
J. Kinjo et al., Six new triterpenoidal glycosides, including two new sapogenols from Albiiziae Cortex, Chphbul 40, 3269–3273 (1992). Julibrosid-A2 enthält in der Tetraose an OH-3 N-Acetylglucosamin; Julibrosid-B1 hat Julibrogenin-B und Julibrosid-C1 hat Julibrogenin-C als Sapogenin.
Jette T. Knudsen et al., Floral scents — A checklist of volatile compounds isolated by head-space techniques— A review, PHYCHEM 33, 253–280 (1993).
T. M. Varghese and A. Kaur, In vitro propagation of Albiizia lebbeck Benth., Current Sci. 57, 1010–1012 (1988).
M. I. H. Farooqi and K. N. Kaul, Chemical examination of Siris (Albizzia lebbek Benth.) gum, J. Sci. Industr. Res., India, 21B, 454–455 (1962).
K. Shrivastava and V. K. Saxena, A new saponin from roots of Albizzia lebbeck, Fitoterapia 59, 479–480 (1988). Tetraose aus Rha, Xyl, Ara und Glc aufgebaut.
G. V. N. Rayudu and S. Rajadurai, Lebbecacidin and melacacidin from heartwood of Albiizia lebbek, Leather Sci. (Madras, India) 12, 362–363 (1965). Ex CA 64, 2045 (1966).
S. R. Gupta et al., Chemical components of Albizzia lebbeck heartwood, Indian J. Chem. 4, 139–141 (1966).
G. V. N. Rayudu and S. Rajadurai, Occurrence of D-catechin and (+)-leucocyanidin in Albizzia lebbek, Leather Sci. (Madras, India) 12, 21–22 (1965). Ex CA 62, 10823 (1965).
V. J. Tripathi and B. Dasgupta, Neutral constituents of Albiizia lebbeck, Current Sci. 43, 46–47 (1974).
P. C. Pal et al., Saponins from Albizia lebbeck, PHYCHEM 38, 1287–1291 (1995). Als Zuckerbausteine der Saponine Xyl, Ara und Glc nachgewiesen.
H. Hasan et al., Sapogenin of Albizzia lebbek Benth. bark, Indian J. Pharm. 23, 331–332 (1961).
I. P. Varshney and S. C. Sharma, Chemical investigation of the Albizzia lebbek leaves and Albizzia lucida seeds and bark, Indian J. Appl. Chem. 32, 73–74 (1969).
A. K. Barua and S. P. Raman, Isolation of acid sapogenins from Albiizia lebbeck Benth., Science and Culture 23, 435–436 (1958).
Id., The constitution of albigenin, a new triterpene from Albizzia lebbeck Benth., Tetrahedron 18, 155–159 (1962).
I. P. Varshney and G. Badhwar, Study of the sapogenins from Albiizia lebbek seeds, Bull. Chem. Soc. Japan 43, 446–447 (1970).
P. K. Agrawal and B. Singh, Chemical constituents of Albiizia lebbeck, Indian J. Pharm. Sci. 53, 24–26 (1991). Nach diesen Autoren sind aus A. lebbeck auch Reynoutrin, Rutin, Myricitrin und Robinin bekannt (ohne genaue Literaturzitate!).
M. O. Farooq et I. P. Varshney, La saponine et la sapogénine du péricarp des fruits d’ Albizzia lebbek Benth. 1“ partie. L’isolement d’une nouvelle sapogénine, l’albiiziagénine, Bull. Soc. Chim. France 1953, 301–302.
CH. SanniÉ et al., Sur les sapogénines d’ Albizzia lebbek Benth., Bull. Soc. Chim. France 1957, 1440–1444.
I. P. Varshney et al., Study of saponins and sapogenins of Sesbania grandiflora seeds, AlbiZZia lebbek pods and Psidium guayava fruits, Indian J. Appl. Chem. 34, 214–216 (1971).
I. P. Varshney et al., Lebbekanin C, a new saponin from AlbiZZia lebbeck pods, PM 24, 183–189 (1973). Mit auf S. 184 Übersicht über bekannte AlbiZia-Saponine und -Sapogenine.
L. N. Misra et al., N-Demethylbudmunchiamines from AlbiZZia lebbek seeds, PHYCHEM 39, 247–249 (1995).
I. P. Varshney et al., Partial structure of lebbekanin A, a new saponin from the seeds of AlbiZZia lebbek Benth., Indian J. Chem. 11, 1094–1096 (1973). Auch Lebbekanin-B mit Oleanolsäure als Sapogenin isoliert.
I. P. Varshney et al, Study of lebbekanin D, a new saponin of AlbiZZia lebbek flowers, J. Indian Chem. Soc. 52, 12021203 (1975). 3,28-Bisdesmosidisches Saponin mit Echinocystsäure als Sapogenin.
I. P. Varshney and D. C. Jain, Glycosides from the flowers of AlbiZZia lebbek, Indian J. Chem. 16B, 1131–1132 (1978). Die Lebbekanine -D bis -H haben Echinocystsäure als Sapogenin; sie unterscheiden sich nur im Aufbau der Zuckerketten mit Gal, Glc, Ara, Xyl und Rha (D, H) oder mit Glc, Ara, Xyl, Fu und Rha (F und G).
I. P. Varshney and M. S. Y. Khan, On the presence of echinocystic acid and quercetin in flowers of AlbiZZia lebbek Benth., Canad. J. Chem. 39, 1721–1723 (1961).
M. K. Jain and R. K. Mishra, Chemical examination of AlbiZZia lebbeck Benth., Indian J. Appl. Chem. 26, 127–128 (1963).
M. Asif et al., Analysis of AlbiZZia lebbeck flower oil, Fette, Seifen, Anstrichmittel 88, 180–182 (1986).
I. P. Varshney et M. O. Farooq, Etude de l’influence de la nouvelle saponine d’AlbiZZia lebbek Benth. sur la germination et la croissance des graines. Actions des diverses concentrations et des saisons sur les grains de blé, Comptes Rendus Séances Soc. Biol. 146, 902 (1952).
Id., Influence d’une nouvelle saponine d’AlbiZZia lebbek Benth. sur la germination et la croissance des graines de pois chichi (Cicer arietinum L.) et d’orge (Hordeum vulgare L.), Bull. Soc. Chim. Biol. 35, 827–830 (1953).
R. M. Tripathi et al., Studies on the mechanisms of action of AlbiZZia lebbeck, an Indian indigenous drug used in the treatment of atopic allergy; Further studies on the mechanism of the anti-anaphylactic action of AlbiZZia lebbeck, an Indian indigenous drug, J. Ethnopharmacol. 1, 385–396, 397–406 (1979). Rindendekokte werden mit Erfolg zur Behandlung von Bronchialasthma und Ekzemen (lokale Applikation) verwendet.
S. K. Chakraborti et al., Triterpenes from the seeds of AlbiZZia lucida Benth., Science and Culture 28, 385–386 (1962). Auch nicht-identifiziertes neutrales Triterpen isoliert. Nach CA 59, 15601 (1963) ebenfalls Oleanolsäure erhalten.
FulviaOrsini et al., Isolation of a new compound related to 4-methoxypyridoxine from AlbiZZia lucida, Gazz. Chim. Ital. 119, 63 —64 (1989).
K. Wada et al., An antivitamine B6, 4’-methoxypyridoxine from the seed of Ginkgo biloba, Chphbul 33, 3555–3557 (1985).
FulviaOrsini et al., Saponins from AlbiZZia lucida, PHYCHEM 30, 4111–4115 (1991).
A. Iro et al., Lignan glycosides from bark of AlbiZZia myriophylla, PHYCHEM 37, 1455–1458 (1994).
I. P. Varshney and M. S. Y. Khan, Acid sapogenins isolated from Maharashtrian AlbiZZia odoratissima seeds, J. Pharm. Sci. 50, 923–925 (1961).
Id., On the second sapogenin of Maharashtrian AlbiZZia odoratissima Benth. seeds, Bull. Chem. Soc. Japan 38, 1214 (1965).
Id., Isolation of odoratissimin, a new saponin from seeds of AlbiZZia odoratissima Benth., J. Sci. Industr. Res. (India) 21B, 30–33 (1962). Dieses Saponin mit anderem Sapogenin wurde aus einem Samenmuster von Uttar Pradesh gewonnen.
L. R. Row and C. V. R. Sastry, Isolation of (+)-O pentamethyl dihydromelanoxetin from AlbiZZia odoratissima Benth., Tetrahedron 19, 1371–1376 (1976). Nach Methylierung isoliert; die Autoren nehmen genuines Vorkommen von Dihydromelanoxetin an; vgl. dazu aber Ref. [12].
S. P. Gunasekera et al., Constituents of Pithecellobium multiflorum, JNP 45, 651 (1982). Coll. Dept. Loreto (peruanisch Amazonia); nach Lewis 1987 entspricht dieses Taxon Albilia polyantha (Spreng. f.) G. P. Lewis nov. comb.
M. O. Farooq et al., Sur une sapogénine d’AlbiZZia procera Benth.; acide machaérinique, CR 246, 3261–3263 (1958).
M. O. Farooq et al., Samen aus Madhya Pradesh untersucht. Vgl. auch eid., Arch. Pharm. 292, 57–62 (1959).
M. O. Farooq et al., The sugar constituents of proceranin, saponin of AlbiZZia procera Benth., Current Sci. 27, 489 (1958).
I. P. Varshney and S. Y. Khan, Isolation of proceric acid, a new triterpenic acid, from Maharashtrian AlbiZZia procera Benth., J. Pharm. Sci. 53, 1532–1533 (1964). Samen aus Poona (Maharashtra) lieferten anderes Sapogenin.
I. P. Varshney, The structure of proceric acid, Bull. National Inst. Sci. 37, 95–99 (1968). Machaerinsäure und Procerasäure haben die gleiche Struktur, sind aber stereochemisch verschieden.
I. P. Varshney et al., Partial structure of proceranin-A: A new saponin from the seeds of AlbiZZia procera Beath., Indian J. Chem. 11, 1189–1190 (1973). Samen von Madhya Pradesh; Hydrolysenprodukte: Procerinsäure, Glc, Gal, Ara, Xyl, Rha, Fu.
S. Roy and A. K. Roy, Chemical investigation of seeds of Albizzia procera Beath., Experientia 23, 182–183 (1967).
Id., Constitution of proceragenin-A, a triterpenoid sapogenin from Albizzia procera Bentb., Tetrahedron Letters 1966, 5743–5750. Ist Lacton einer Dihydroxyoleanolsäure, die selber auch nachgewiesen wurde; wahrscheinlich handelte es sich hier um Acaciasäure (16,21-Dihydroxyoleanolsäure) und deren 28 -a 21-Lacton, nicht um 15,16-Dihydroxyoleanolsäure und deren 28 -+ 15-Lacton.
M. O. Farooq et al., Etude chimique de l’huile de la graine d’ Albizzia procera Benth., Bull. Soc. Chim. Biol. 41, 901–906 (1959). Das procera-Samenöl wird mit Samenölanalysen von A. amara, lebbeck und odoratissima verglichen.
M. I. H. Farooqi and K. N. Kaul, Indian J. Chem. 1, 542 (1963); 3, 217–219, 473–474 (1965); 8, 143–144 (1970). Mengenmäßig überwiegende Bausteine dieses Gummis sind Gal und Ara.
P. S. Steyn et al., Structure elucidation of two neurotoxins from Albizia tanganyicensis, South African J. Chem. 40, 191–192 (1987).
A. Fernandes Costa et al., AlbiZia tanganyicensis Bak. f. - Contribuifóes Para o seu estudo farmacognosico, Garcia de Orta 8, 597–614 (1960). Orientierend-chemische und pharmakographische Untersuchungen der Rinde von Bäumen von Angola; 5 anatomische Abb.
D. W. Drummond and E. Percival, Structural studies of the gum exudate of Albizzia zygia, Jcs 1961, 3908. Hauptkette durch (1ß 3)-gebundene Gal-Reste gebildet; übrige Zucker und die Uron-und Aldobiouronsäure in Seitenketten, welche auch 6)-gebundene Gal enthalten; ausführliche Vergleichung des A. zygia-Gummis mit anderen besser bekannten Schleimexsudaten und Hinweis auf Übereinkünfte mit anderen Mimosoideen-Gummis und auf die typischen Eigenschaften (z. B. Man-Gehalt) des zygiaGummis.
H. C. MrrAL and J. Adotey, Studies on AlbiZia zygia gum. 1. Certain physicochemical properties; 2. Rheological properties of the mucilage; 3. Stabilization of emulsions, Pharm. Acta HeIv. 46, 637–642 (1971); 47, 508–515 (1972); 48, 412–419 (1973). Das zygia-Gummi ist wie Gummi Arabicum peroxidasehaltig; diese Autoren geben als Hydrolysenprodukte Ara, Gal, GIcU und GaIU an; offensichtlich verwechselten sie 4–0-McGIcU mit Ga1U; ihre Gummimuster wurden in Ghana eingesammelt.
W. R. Ashton et al., Physical properties and applications of aqueous solutions of Albizzia zygia gum, J. Sci. Food. Agric. 26, 697–704 (1975).
P. Pachaly et al., Inhaltsstoffe von Albizzia zygia. 1. und 2. Mitt., Arch. Pharm. 314, 18–25 (1981); 316, 651–652 (1983).
L. Vilela Alegrio et al., Triterpene esters from Archidendropsis streptocarpa (Fournier) Nielsen, Plantes Méd. Phytothérapie 26, 101–108 (1993).
L. A. Swain and J. T. Romeo, Metabolism of pipecolic acid derivatives in Calliandra and Zapoteca, Phychem 27, 397–399 (1988). Fütterung von isolierten Blättern über die Blattstiele mit markierten Verbindungen; Versuchspflanzen waren die kolumbianischen Taxa Calliandra angustifola und Zapoteca formosa.
M. Marlier et al., Acide 4,5-dihydroxy-L-pipécolique à partir de Calliandra haematocephala, PHYCHEM 11, 2597–2599 (1972). Aus I kg Frischblatt 7 g freie Aminosäuren isoliert; relativ viel Pipecolinsäure, 4-Hydroxy-und 5-Hydroxypipecolinsäure nachgewiesen und Stoff A, B und C rein isoliert; Stoff A mit 4,5-Dihydroxypipecolinsäure, C6H1104N, und Stoff C mit Tyramin identifiziert In dieser Arbeit Ausbeuten nicht erwähnt. Später wurde die Dihydroxypipecolinsäure als 2,4-trans-4,5-cisIsomer charakterisiert (vgl. PHYCHEM 15, 183 [1976]).
M. Marlier et al., 2S,4R-Carboxy-2-acetylamino-4 piperidine dans les feuilles de Calliandra haematocephala, PHYCHEM 18, 479481 (1979). Stoff B von [83] (410 mg; C8H14N203) mit 4-Acetylaminopipecolinsäure identifiziert.
A. B. Bleecker and J. T. Romeo, 2,4-trans-4,5-trans-Dihydroxypipecolic acid (1) and cis-5-hydroxypipecolic acid (2) from leaves of Calliandra angustifolia and sap of C. confusa, Phychem 20, 1845–1846 (1981). 780 mg 1 und 270 mg 2 aus 1,2 kg Blattpulver (in Venezuela geerntet) von C. angustifolia; gleiche Aminosäuren aus in Guatemala gewonnenem Saft („extracted from trees via the Prescape process“) von C. confusa.
A. B. Bleecker and J. T. Romeo, 2,4-cis-4,5-cis-4,5-Dihydroxypipecolic acid - A naturally occurring imino acid from Calliandra pittieri, PHYCHEM 22, 1025–1026 (1983). 270 mg des neuen Dihydroxypipecolinsäure-Isomers aus 800 g getrockneten Blättern gewonnen; das gleiche Isomer wurde in weiteren mittel-und südamerikanischen Calliandra-Arten nachgewiesen; in größeren Mengen (bis 0,25%) bei C. carbonaria, deamii, formosa, lambertiana, purdiei und tenuiflora; von einzelnen Taxa waren ebenfalls Samen verfügbar; sie wiesen dieselben Aminosäure-Spektren wie die Blätter auf.
J. T. Romeo et al., cis-4-Hydroxypipecolic acid (3) and 2,4-cis-4,5-trans4,5-dihydroxy pipecolic acid (4) from Calliandra, PHYCHEM 22, 1615–1617 (1983). Zwei neue Hydroxypipecolinsäure-Isomere aus Blättern von C. pittieri isoliert: 145 mg 3 und 580 mg 4 aus 800 g getrockneten Blättern aus Kolumbien; Iminosäure-Spektra der Blätter von 8 Arten mit analytischen Methoden ermittelt (vgl. Tabelle 30).
J. T. Romeo, Preliminary chemotaxonomic investigations of Colombian Calliandra species based on nonprotein amino acids, Bull. Igsm 12, 19–23 (1984). Approximative Hydroxypipecolinsäuren-, Pipecolinsäure-und Prolin-Gehalte in Blättern von 13 Arten ermittelt. Auch kurze Besprechung der ökologischen Bedeutung der individuellen Iminosäuren.
J. T. Romeo, Insecticidal imino acids in leaves of Calliandra, Biociise 12, 293–297 (1984).
J. T. Romeo and L. A. Swain, Persistence of nonprotein seed ainino acid S-(ß-carboxyethyl)-cysteine in young leaves of Calliandra rubescens, J. Chem. Ecol. 12, 2089–2096 (1986).
Monique S. J. Simmonds et al., The effect of non protein amino acids from Calliandra plants on the aphid Aphis fabae, Biocise16, 623–626 (1988).
J. T. Romeo and Monique S. J. Simmons, Nonprotein amino acid feeding deterrents from Calliandra, S. 59–68 in: J. T. Arnason et al. (Eds), Insecticides of plant origin, Acs Symposium Series 387, Acs, Washington, DC 1989.
T. Takeda et al.; T. Nakamura et al., Chphbul 41, 2132–2137 (1993); 42, 1111–1115 (1994). Isolation und Struktur der Calliandrasaponine -A bis -E
RosalbaEncarnacion D. et al., Two new flavones from Calliandra californica, JNP 57, 1307–1309 (1994). Das neue 5-Hydroxytetramethoxyflavon hatte antibiotische Wirkung; das entsprechende 5-Desoxyflavon war unwirksam; Ausbeuten 5 und 15 mg aus 260 g Wurzeln.
C. N. Aguwa and A. M. Lawal, Pharmacological studies on the active principle of Calliandra portoricensis leaves, J. Ethnopharmacol. 22, 63–71 (1988).
P. A. Akah and J. I. Nwaiwu, Anticonvulsant activity of root and stem extracts of Calliandra portoricensis, J. Ethnopharmacol. 22, 205–210 (1988).
K. Ezaki et al., New dihydrophenanthrapyrans from Cedrelinga catenaeformis, Tetrahedron Letters 32, 2793–2796 (1991).
J. Cohen Marx and B. M. Tursch, Occurrence of a triterpene of the ß-amyrin type, the lactone of machaerinic acid, in the fruits of Enterolobium contortisiliquum, Anais Assoc. Brasil. Quim. 22, 31–35 (1963; publ. 1966); 23, 5–7 (1964; publ. 1967): Ex CA 64, 14591 (1966); 68, 66333 (1968). Auch reichlich Gerbstoffe waren in den Früchten vorhanden.
MariaCelia C. Delgado et al., 3ß-Hydroxy-21ß-E-cinnamoyloxyolean-12-en-28-oic acid, a triterpenoid from Enterolobium contortisiliquum, PHYCHEM 23, 2289–2292 (1984). Das 3-Glucosid wurde durch die gleichen Autoren 1986 beschrieben: Quim. Nova 9, 119 (1986); ex PHYCHEM 30, 1364 (1991).
M. Valle DE Sousa and L. Morhy, Enterolobin, a hemolytic protein from Enterolobium contortisiliquum seeds. Purification and characterization, Anais Acad. Brasil. Cienc. 61, 405–412 (1989); R. S. B. Cordeiro et al., Pro-inflammatory activity of enterolobin: a haemolytic protein extracted from Enterolobium contortisiliquum, European J. Pharmacol. 183, 2270–2271 (1990).
X. A. Dominguez et al., Estudio quimico de la corteza y fruto del „Guanacastle o Parota“, Enterolobium cyclocarpum, una Leguminosa, Rev. Latinoamer. Quim. 10, 46–48 (1979).
G. H. Mahran et al., Investigation of the saponin content of Enterolobium cyclocarpum Griseb., J. African Med. Plants 3, 35–45 (1980); auch Zusammenfassung in PM 36, 267 (1979).
Gladys L. Pinto and Aida L. Corredor, Estudio analitico de los exudados gomosos provenientes de la especie Enterolobium cyclocarpum, Acta Cientifica Venezolana 37, 92–93 (1986).
Gladys L. Pinto et al., Chemical and 13 C Nmr studies of Enterolobium cyclocarpum gum and its degradation products , Phychem 37, 1311–1315 (1994).
T. C. Morton et al., Trans-4-Methoxypipecolic acid, an amino acid from Inga paterno, PHYCHEM 30, 2397–2399 (1991).
T. C. Morton and J. T. Romeo, Preliminary chemical investigation of Costa Rican Inga species, Bull. Igsm 18, 112–123 (1990).
C. Nichols-Orians, Condensed tannins, attine ants, and the performance of symbiotic fungus, J. Chem. Ecol. 17, 11771195 (1991). Die durch Blattschneiderameisen geernteten Blätter dienen zur Züchtung von Pilznahrung; zu hohe Gerbstoffgehalte des für die Herstellung der Pilzbeete verwendeten Blattmaterials kann die Entwicklung der Pilze hemmen.
I. G. Kingston and R. C. Munjal, Plant Anticancer Agents. Viii. Constituents of Inga punctata, JNP 41, 499–500 (1978). 10 kg extrahiert; die im Text angegebenen Ausbeuten wurden durch mich anhand der durch die Autoren im experimentellen Teil mitgeteilten Angaben berechnet.
A. Ito et al., Alkaloid from bark of Albizzia myriophylla, Chphbul 42, 1966–1967 (1994). 32 mg Albizzin-A, C17H2902N3, aus 1,8 kg Rinde; es besitzt eine dem Equisetum-Alkaloid Palustrin (Formel Bd. Vii, 414) sehr ähnliche Struktur.
M. Trockenbrodt and N. Parameswaran, A contribution to the taxonomy of the genus Inga Scop. (Mimosaceae) based on the anatomy of the secondary phloem, Iawa Bull. n.s. 7, 62–71 (1986). Bei einem von zwei Mustern von I. ingoides Willd. waren schizogene Exkreträume vorhanden; auch Form und Verteilung der Kristalle von Calciumoxalat beschrieben.
SuzanneKoptur, Outcrossing and pollinator limitation of fruit set: Breeding systems of neotropical Inga trees of lower montane forest at Monteverde, Costa Rica, Evolution 38, 1130–1143 (1984).
OdilePoncy, Le genre Inga (Légumineuses, Mimosoideae) en Guyane française, ystématique, morphologie des formes juvéniles, écologie, Mém. Mus. Nati. Hist. Naturelle, Nouvelle Série B, Botanique Tome 31 (1985) = Studies on the flora of the Guianas No. 13, Paris 1985; 128 S. und XI Tafeln.
Martha DE OliveiraGuerra et al., „Screening“ de plantas nativas de Amazonia com potencial inhibidor da fertilida em ratas, Supl. Acta Amazonica 18 (1–2), 129–134 (1988).
H. Ripperger et al., O(3)-(2-Acetylamino-2-deoxy-ß-D-glucopyrano yl)-oleanolic acid, a novel triterpenoid glycoside from two Pithecellobium species, PHYCHEM 20, 2434–2435 (1981). Beide Taxa in Cuba gesammelt; Belegexemplare in Havanna.
A. G. R. Nair and S. S. Subramaniam, Flavonoids of the flowers of.. Current Sci. 31, 504–506 (1962). Pithecellobium dulce auf S. 505. Frische Blüten lieferten 0,1% Isoquercitrin.
S. K. Nigam and C. R. Mitra, Pithecolobium dulce. IV. Constituents of flowers, heartwood and root bark, PM 16, 335–337 (1968). Die Phytosteringemische von Blüten und Holz enthielten reichlich a-Spinasterin.
S. K. Nigam and C. R. Mitra, Pithecolobium dulce. Iii. Minor constituents of trunk bark, Indian J. Chem. 5, 395 (1961).
G. V. N. Rayudu and S. Rajadurai, Studies on the extractives of heartwood of Pithecolobium dulce: Isolation of (+)-leucofisetinidin, Leather Science (India) 12, 301 (1965). Lieferte Trimethylether, C18H20O6, F = 180, [a] o = + 17.
S. K. Nigam and C. R. Mitra, Pithecolobium dulce. V. Chemistry of seed saponin and constituents of the leaves, PM 18, 44–50 (1970).
D. Adinarayana and P. R. Chetty, Chemical investigation of South Indian medicinal plants, Indian J. Chem. 24B, 453 (1985).
S. K. Nigam et al., Pithecolobium dulce. I. Isolation and characterization of legume constituents, J. Pharm. Sci. 52, 459–462 (1963).
N. P. Sahu and S. B. Mahato, Antiinflammatory triterpene saponins of Pithecellobium duke: Characterization of an echinocystic acid bisdesmoside, PHYCHEM 37, 1425–1427 (1994).
A. Banerjee and M. Jain, Studies on Pithecellobium seed oils, Fitoterapia 59, 405 (1988).
K. M. Hosamani, A minor source of vernolic, malvalic, and sterculic acids in Pithecellobium duke (syn. Inga dulcis) seed oil, J. Amer. Oil Chemists’ Soc. 72, 489–492 (1995).
A. G. Van Veen en A. J. Hyman, Het giftige bestanddeel van de djengkol, Geneeskundig Tijdschrift Nederl. Indie 73, 991–1001 (1933). Isolation von Djengkolsäure aus dem Urin von Patienten und Freiwilligen, sowie von zwangsgefütterten Affen (freiwillig fressen sie Djengkolbohnen nicht). Genaue Beschreibung der Symptome der Djengkolvergiftung (blutiger Urin; zuweilen Anurie; oft scharfe Kristalle von Djengkolsäure im Urin; vor allem bei Kindern kann die Vergiftung letal sein); deutsche Zusammenfassung auf S. 1000–1001.
A. G. Van Veen und A. J. Hyman, Die Djenkolsäure, eine neue schwefelhaltige Aminosäure, Rec. Tray. Chim. Pays-Bas 54, 493–501 (1935). Strukturaufklärung der jetzt Djenkolsäure genannten Aminosäure, CH2[-Sch 2-CH(NH2)-Cooh]2, und weitere Angaben zu ihrer Toxikologie. Djenkolbohnen enthalten etwa 2% Djenkolsäure; dementsprechend enthält eine Bohne von 15 g etwa 300 mg Djenkolsäure. „Der Organismus der Djenkolesser hat so bisweilen einige Gramme dieser merkwürdigen Säure zu verarbeiten! Sie ist im Blut bei pH 7 in gelöstem Zustand anwesend, kann aber nach ihrer Ausscheidung in den Nieren infolge einer sauren Reaktion des Harns auskristallisieren und so leicht eine mechanische Verletzung der Harnwege hervorrufen.“ Zwangsgefütterte Affen schieden wie der Mensch Djenkolsäure mit dem Ham aus, doch wurden bei ihnen nie Symptome von Djenkolvergiftung beobachtet. Die Faktoren, welche den Grad der Anfälligkeit verschiedener Menschen für Djenkol-Vergiftung beeinflussen oder festlegen, scheinen noch nicht mit Sicherheit bekannt zu sein.
Min-WonLee et al., Flavan-3-olgallates and proanthocyanidins from Pithecellobium lobatum, PHYCHEM 31, 2117–2120 (1992).
N. H. Lajis and M. N. Kan, Extraction, identification, and spectrophotometric determination of second ionization-constant of methylgallate, a constituent present in the fruit shells of Pithecellobium jiringa, Indian J. Chem. 33B, 609–612 (1994). Extraktion mit Mcoh. Methylgallat könnte Isolierungsartefakt sein.
P. C. Matri, 13-At/grin from Pithecellobium bigeminum Mart., Bull. Bot. Survey India 5, 91 (1963).
M. Y. Tsuda et al., Marked formation of thioproline, an effective nitrite trapping agent in vivo, in boiled djenkol beans (Indonesian edible beans), Mutation Research 252 (1), 113–114 (1991).
K. E. Magnus and C. E. Seaforth, The Rain Tree. A Review, Tropical Sci. 7, 6–11 (1965). Enthält auch Erklärung für Namen des Baumes. In der Regenzeit geben verwundete Aste einen stark phenolhaltigen Blutungssaft ab, der für die Bodenflora unter den Bäumen toxisch ist. Nach Beobachtungen in Westindien beginnt dieses Bluten wenige Stunden nach starken Regenfällen und hält dann bis 20 Stunden an; ein einziger verwundeter Ast lieferte in 12 Stunden 200 ml Blutungssaft mit pH 5,5, der viel PA und Catechine enthielt.
L. Van Itallse, Over Pithecolobium saman Bentham, Pharm. Weekblad 69, 941–963 (1932).
S. K. Nigam et al., Constituents of Samanea saman bark, PHYCHEM 10, 1954–1955 (1971).
G. Misra et al., Constituents of Samanea saman leaves, seeds and heartwood, PHYCHEM 10, 3313–3314 (1971).
K. Wiesner et al., Structure ofpithecolobin. II and Iii, Canad. J. Chem. 46, 1881–1886; 3617–3624 (1968).
I. P. Varshney et al., Indian J. Chem. 14B, 814–815 (1976); 16B, 166–167 (1978); J. Indian Chem. Soc. 54, 992–994 (1977); Indian J. Pharm. Sci. 40, 60–61 (1978); Fitoterapia 56, 281–283 (1985). Samanin-A (Samen), -B (Fruchtwand), -C (Holz), -D (Blüten) und -E (Rinde) von Pithecolobium saman.
Mrs. S. Dan et al., Chemical investigation of three indigenous plants, J. Indian Chem. Soc. 59, 419–420 (1982). Bei Pithecellobium saman 668 g lufttrockene Hülsen (oder ganze Früchte?: „pods“) extrahiert; für Isolation von Lupeol vide auch P. C. MAtTI, Lupeol from Samanea saman (facq.) Merrill, Bull. Bot. Survey India 5, 269 (1963).
R. E A. Altman, Steroidal sapogenins in Amazonian plants, Nature 173, 1098 (1954).
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Hegnauer, R. (1996). Mimosoideae. In: Chemotaxonomie der Pflanzen. Lehrbücher und Monographien aus dem Gebiete der Exakten Wissenschaften, vol 34. Birkhäuser, Basel. https://doi.org/10.1007/978-3-0348-9175-2_3
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