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Praktische Grundlagen der Zellbiologie

  • Sabine Schmitz
  • Christine Desel
Chapter
Part of the Experimentator book series (EXPERIMENTATOR)

Zusammenfassung

In diesem Kapitel werden die wichtigsten grundlegenden Arbeitstechniken vorgestellt, die in der Praxis am häufigsten eingesetzt werden. Aufgrund der großen Bandbreite kann hier nur eine Auswahl angeboten werden. Da sich zudem die Möglichkeiten in der Praxis durch neue Methoden ständig erweitern, muss jeder Experimentator sich zusätzlich über neue Verfahren oder Kits, die der Beantwortung seiner Fragestellung nützlich sein können, selbst auf dem Laufenden halten.

Literatur

  1. 1.
    Gottschalk A (1927) Methylglyoxalase und Co-Zymase. Biochem Z 182:470Google Scholar
  2. 2.
    Koolman J, Röhm K-H (2015) Taschenatlas der Biochemie, 3. Aufl.Google Scholar
  3. 3.
    Loewen M Subcellular (2010) Fractionation: Ultracentrifugation. www.cbr.nrc.ca/loewen/Home.html Zugegriffen: 2015
  4. 4.
    Boujtita N, Noles SR (2010) Ultrazentrifugation – Einsatzmöglichkeiten und Hindernisse. LaborPraxisGoogle Scholar
  5. 5.
    Dainiak MB, Kumar A, Galaev IY, Mattiasson B (2007) Methods in cell separations. Adv Biochem Eng Biot 106:1–18Google Scholar
  6. 6.
    Amersham Biosciences, (1933) Percoll – methodology and applications. Amersham Biosciences. J. Biol. Chem, Rockville, Maryland, USAGoogle Scholar
  7. 7.
    Svedberg T (1933) Sedimentation constants, molecular weights, and isoelectric points of the respiratory proteins. J Biol Chem 103:311–325Google Scholar
  8. 8.
    Cole JL, Lary JW, Moody TP, Laue TM (2008) Analytical ultracentrifugation: sedimentation velocity and sedimentation equilibrium. Methods Cell Biol 84:143–179CrossRefPubMedPubMedCentralGoogle Scholar
  9. 9.
    Demeler B (2010) Methods for the design and analysis of sedimentation velocity and sedimentation equilibrium experiments with proteins. In: Coligan JE et al (Hrsg) Current protocols in protein science, Chapter 7, Unit 7.13. Beckman Coulter, GmbH KrefeldGoogle Scholar
  10. 10.
    Beckman Coulter (2006) Rotor, Das Life Science Magazin für Genomics, Cellomics, Proteomics, Automation und Zentrifugation. Beckman Coulter, GmbH KrefeldGoogle Scholar
  11. 11.
    Beckman Coulter (2008) Rotor, Das Life Science Magazin für Genomics, Cellomics, Proteomics, Automation und Zentrifugation, 7. Beckman Coulter, GmbH KrefeldGoogle Scholar
  12. 12.
    Beckman Coulter (2009) Rotor Das Life Science Magazin für Genomics, Cellomics, Proteomics, Automation und Zentrifugation. Beckman CoulterGoogle Scholar
  13. 13.
    Beckman Coulter (2009) A centrifuge primer. Elsevier, Löwen NiederlandeGoogle Scholar
  14. 14.
    Michelsen U, von Hagen J (2009) Isolation of subcellular organelles and structures. Methods Enzymol 463: 305–328Google Scholar
  15. 15.
    Holden P, Horton WA (2009) Crude subcellular fractionation of cultured mammalian cell lines. BMC Res Notes 10(2):243, 1–10Google Scholar
  16. 16.
    Lea T, Vartdal F, Nustad K, Funderud S, Berge A, Ellingsen T, Schmid R, Stenstad P, Ugelstad J (1988) Monosized, magnetic polymer particles: their use in separation of cells and subcellular components, and in the study of lymphocyte function in vitro. J Mol Recognit 1:9–18CrossRefPubMedGoogle Scholar
  17. 17.
    Leivestad T, Gaudernack G, Ugelstad J, Vartdal F, Thorsby E (1987) Isolation of pure and functionally active T4 and T8 cells by positive selection with antibody-coated monosized magnetic microspheres. Transplant Proc 19:265–267PubMedGoogle Scholar
  18. 18.
    Vartdal F, Kvalheim G, Lea TE, Bosnes V, Gaudernack G, Ugelstad J, Albrechtsen D (1987) Depletion of T lymphocytes from human bone marrow. Use of magnetic monosized polymer microspheres coated with T-lymphocyte-specific monoclonal antibodies. Transplantation 43:366–371CrossRefPubMedGoogle Scholar
  19. 19.
    Schmitz S (2011) Der Experimentator Zellkultur. Springer Spektrum, Heidelberg, DeutschlandGoogle Scholar
  20. 20.
    Fabian K (2007) Lizenziert unter CC BY-SA 3.0 de über Wikimedia Commons (Diskussion). https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Duchflusszytometer.png#/media/File:Duchflusszytometer.png. Zugegriffen: 07. Juni 2017
  21. 21.
    Rothe G (2007) Technische und methodische Grundlagen der Durchflusszytometrie. In: Sack U, Tárnok A, Rothe G (Hrsg) Zelluläre Diagnostik, Grundlagen, Methoden und klinische Anwendungen der Durchflusszytometrire. Karger, Basel, Schweiz, S 27–70Google Scholar
  22. 22.
    Tung JW, Heydari K, Tirouvanziam R, Sahaf B, Parks DR, Herzenberg LA (2007) Modern flow cytometry: a practical approach. Clin Lab Med 27:453–468CrossRefPubMedPubMedCentralGoogle Scholar
  23. 23.
    Tung JW, Parks DR, Moore WA, Herzenberg LA (2004) New approaches to fluorescence compensation and visualization of FACS data. Clin Immunol 110:277–283CrossRefPubMedGoogle Scholar
  24. 24.
    Sabban S (2011) Development of an in vitro model system for studying the interaction of Equus caballus IgE with its high-affinity FcεRI receptor. PhD thesis, The University of SheffieldGoogle Scholar
  25. 25.
    BD Biosciences (2009) An introduction to compensation for multicolor assays on digital flow cytometers. BD Biosciences, San Jose, USAGoogle Scholar

Copyright information

© Springer-Verlag GmbH Deutschland, ein Teil von Springer Nature 2018

Authors and Affiliations

  • Sabine Schmitz
    • 1
  • Christine Desel
    • 2
  1. 1.JülichDeutschland
  2. 2.KielDeutschland

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