Springer Nature is making SARS-CoV-2 and COVID-19 research free. View research | View latest news | Sign up for updates

Das weibliche Geschlechtssystem der Gattung Polystomoides Ward, 1917 (Monogenea)

The female genital system of the genus Polystomoides ward, 1917 (Monogenea)

  • 28 Accesses

  • 6 Citations

Zusammenfassung

Das weibliche Geschlechtssystem der folgenden Arten der Gattung Polystomoides Ward (Monogenea) wurde untersucht: P. malayi Rohde, P. siebenrockiellae Rohde, P. asiaticus Rohde, P. renschi Rohde. Alle Arten besitzen einen Oocapt mit Schließzellen im terminalen Abschnitt des Ovars und einen ventilartig modifizierten Ovidukt, in dessen Lumen die Spermatozoen wahrscheinlich in die Eizellen eindringen. Der Ovidukt öffnet sich in eine Cavitas communis, die meist eine Anzahl von Spermatozoen enthält und daher als Receptaculum seminis anzusprechen ist. Sie nimmt auch die beiden Ductus vitello-vaginales und den Ductus genito-intestinalis auf. Die Vaginae öffnen sich durch je einen Vaginalporus nach außen. Der Ductus communis (Ovovitellodukt) mündet durch einen Sphinkter in den Ootyp. Muköse Ootypdrüsenzellen öffnen sich in das Lumen dieses Sphinkters. Bei P. malayi, der größten Art, besteht der seröse Drüsenanteil des Ootyps im Gegensatz zu allen anderen, bisher untersuchten parasitischen Platyhelminthen aus zwei Komponenten, einem sekretorischen Ootypepithel und einer kompakten, durch eine Bindegewebsscheide vom Parenchym abgesetzten Ootypdrüse. P. asiaticus und P. renschi und wahrscheinlich auch P. siebenrockiellae (von welcher Art nur junge Exemplare untersucht wurden) besitzen nur ein sekretorisches Ootypepithel. Wegen der unterschiedlichen Ausbildung des Oogenotops selbst bei Arten einer Gattung ist Vorsicht bei der Verwendung dieses Organs für taxonomische Studien angebracht. — An den Ootyp schließt sich der Uterus, der durch einen gemeinsamen Genitalporus zusammen mit dem männlichen Geschlechtskanal nach außen mündet. In den Genitalporus von P. malayi öffnen sich mit Silber imprägnierbare Drüsenzellen. — Auch das männliche Geschlechtssystem ist bei der größten Art, P. malayi, am höchsten differenziert. — Angaben über die Entwicklung des Oogenotops bei P. malayi werden gemacht und die Literatur über den Bau des weiblichen Geschlechtssystems bei Monogenea wird besprochen.

Summary

The female genital systems of the following species of the genus Polystomoides Ward (Monogenea) have been studied: P. malayi Rohde, P. asiaticus Rohde, P. siebenrockiellae Rohde and P. renschi Rohde. All species have an oocapt with “Schließzellen” (closing cells) in the terminal portion of the ovary, and a modified valve-like oviduct, in which the spermatozoa probably enter the oocytes. The oviduct opens into a cavitas communis, which usually contains a number of spermatozoa, thus serving as a seminal receptacle. The two vitello-vaginal ducts and the genito-intestinal duct also enter it. Each vagina opens through one vaginal pore to the outside. The common duct (ovovitelloduct) opens via a sphincter into the ootype. Glandular mucous cells open into the lumen of the sphincter. In P. malayi, the largest species, the serous part of Mehlis' gland consists, contrary to the findings in all other species of parasitic platyhelminths, of two components, i.e. a secretory ootype epithelium and a compact ootype gland, which is separated from the parenchyma by a sheath of connective tissue. P. asiaticus and P. renschi, and probably also P. siebenrockiellae (of which only immature specimens were examined) have only a secretory ootype epithelium. Because of the different structure of the “oogenotop” even in species belonging to one genus, it should be used with caution only for taxonomic studies. The ootype is followed by the uterus which opens to the outside, together with the male genital duct, through a common genital pore. Gland cells, which can be impregnated with silver, open into the common genital pore of P. malayi. The largest species, P. malayi, possesses also the most highly differentiated male genital system. — Data on the development of the oogenotop in P. malayi are given and the literature on the structure of the female genital system in Monogenea is discussed.

This is a preview of subscription content, log in to check access.

Literatur

  1. Braun, M.: In: Bronn's Klass. Ord. Thierreichs. IV. Vermes, p. 490 (1890).

  2. Bychowsky, B. E.: Monogenetic trematodes. Their systematics and phylogeny. Isd. Akad. Nauk SSSR, Moskau-Leningrad (1957); engl. transl. Amer. Inst. Biol. Sci., Washington (1961).

  3. Cerfontaine, P.: Le genre Merizocotyle. Arch. Biol. (Liége) 15, 329–366 (1898).

  4. Dawes, B.: Hexacotyle extensicauda n. sp., a monogenetic trematode from the gills of the tunny (Thynnus thynnus L.). Parasitology 32, 271–286 (1940 a).

  5. — Notes on the formation of egg capsules in the monogenetic trematode Hexacotyle extensicauda. Parasitology 32, 287–295 (1940 b).

  6. Dieckhoff, C.: Beiträge zur Kenntnis der ektoparasitischen Trematoden. Arch. Naturgesch. 57, 246–276 (1891).

  7. Ebrahimzadeh, A.: Histologische Untersuchungen über den Feinbau des Oogenotop bei digenen Trematoden. Z. Parasitenk. 27, 127–168 (1966).

  8. Gönnert, R.: Zur Frage der Eibildung bei Trematoden (Bilharzia mansoni). Verh. dtsch. Zool. 1949, 132–135 (1950).

  9. — Schistosomiasis-Studien. I. Beiträge zur Anatomie und Histologie von Schistosoma mansoni. Z. Tropenmed. Parasit. 6, 18–33 (1955 a).

  10. Gönnert, R.; Schistosomiasis-Studien. II. Über die Eibildung bei Schistosoma mansoni und das Schicksal der Eier im Wirtsorganismus. Z. Tropenmed. Parasit. 6, 33–52 (1955 b).

  11. — Histologische Untersuchungen über den Feinbau der Eibildungsstätte (Oogenotop) von Fasciola hepatica. Z. Parasitenk. 21, 475–492 (1962).

  12. Goto, S.: Studies on the ectoparasitic trematodes of Japan. J. Coll. Sci., Imp. Univ., Japan 8, 1–273 (1894).

  13. Halton, D. W.: Studies on glycogen deposition in Trematoda. Comp. Biochem. Physiol. 23, 113–120 (1967).

  14. Kohlmann, F. W.: Untersuchungen zur Biologie, Anatomie und Histologie von Polystomum integerrimum Fröhlich. Z. Parasitenk. 20, 495–524 (1961).

  15. Löser, E.: Der Feinbau des Oogenotop bei Cestoden. Z. Parasitenk. 25, 413–458 (1965 a).

  16. — Die Eibildung bei Cestoden. Z. Parasitenk. 25, 556–580 (1965 b).

  17. — Die postembryonale Entwicklung des Oogenotop bei Cestoden. Z. Parasitenk. 25, 581–596 (1965 c).

  18. MacCallum, G. A.: Fertilization and egg-laying in Microcotyle stenotomi. Science 37, 340–341 (1913).

  19. Mackiewicz, J. S.: Vitellogenesis and eggshell formation in Caryophyllaeus laticeps (Pallas) and Caryophyllaeus fennica (Schneider) (Cestoidea: Caryophyllaeidea). Z. Parasitenk. 30, 18–32 (1968).

  20. Ortner-Schönbach, P.: Zur Morphologie des Glykogens bei Trematoden und Cestoden. Arch. Zellforsch. 11, 413–449 (1913).

  21. Ozaki, Y.: Studies on the frog-trematode Diplorchis ranae. I. Morphology of the adult form with a review of the family Polystomatidae. J. Sci. Hiroshima Univ., ser. B., div. 1, 3, 193–225 (1935).

  22. Paling, J. E.: The functional morphology of the genitalia of the spermatophore-producing monogenean parasite Diplectanum aequans (Wagener) Diesing, with a note on the copulation of the parasite. Parasitology 56, 367–383 (1966).

  23. Rennison, B. D.: A morphological and histological study of egg-shell formation in Diclidophora merlangi Khun. Diss. Dublin (1953).

  24. Rohde, K.: Studies on the genus Polystomoides Ward, 1917 (Monogenea). I. Description of 4 Malayan species, a key to the known species, and a comparison of the subcuticular layers in Polystomoides and some digenetic trematodes. Zool. Jb. Syst. 92, 345–368 (1965).

  25. — Das Nervensystem der Gattung Polystomoides Ward, 1917 (Monogenea). Z. Parasitenk. 62, 58–76 (1968 a).

  26. Smyth, J. D.: Specific staining of egg-shell material in trematodes and cestodes. Stain technol. 26, 255–256 (1951 a).

  27. — Egg-shell formation in trematodes and cestodes as demonstrated by the methyl or malachite green techniques. Nature (Lond.) 168, 322–323 (1951 b).

  28. — A technique for the histochemical demonstration of polyphenol oxidase and its application to egg-shell formation in helminths and byssus formation in Mytilus. Quart. J. micr. Sci. 95, 139–152 (1954).

  29. — Studies on tapeworm physiology. IX. A histochemical study of egg shell formation of Schistocephalus solidus (Pseudophyllidae). Exp. Parasit. 5, 519–540 (1956).

  30. Stephenson, W.: Physiological and histochemical observations on the adult liver fluke Fasciola hepatica L. III. Egg-shell formation. Parasitology 38, 128–139 (1947).

  31. Stieda, L.: Über den Bau des Polystomum integerrimum. Arch. Anat., Phys. und wiss. Med. 660–678 (1870).

  32. Stunkard, H. W.: Studies on North American Polystomidae, Aspidogastridae and Paramphistomidae. III. Biol. Monogr. vol. 3, No 3, 114 p. (1917).

  33. Williams, H. H.: The anatomy of the trematode Dictyocotyle coeliaca Nybelin, 1941, with a discussion of its relationships with species of the genus Calicotyle Diesing, 1850. Ann. and Mag. Nat. Hist., ser. 13, 1, 465–478 (1958).

  34. — The dimorphism of Polystoma integerrimum (Fröhlich) Rudolphi and its bearing on relationships within the Polystomatidae: Part III. J. Helminth. 35, 181–202 (1961).

  35. Wright, R. R., MacCallum, A. B.: Sphyranura osleri: a contribution to American helminthology. J. Morph. 1, 1–48 (1887).

  36. Zeller, E.: Untersuchungen über die Entwicklung und den Bau des Polystomum integerrimum Rud. Z. wiss. Zool. 22, 1–28 (1872).

  37. — Weiterer Beitrag zur Kenntnis der Polystomen. Z. wiss. Zool. 27, 238–274 (1876).

Download references

Author information

Rights and permissions

Reprints and Permissions

About this article

Cite this article

Rohde, K., Ebrahimzadeh, A. Das weibliche Geschlechtssystem der Gattung Polystomoides Ward, 1917 (Monogenea). Z. F. Parasitenkunde 33, 110–134 (1969). https://doi.org/10.1007/BF00259512

Download citation